Материалы доступны только для специалистов сферы здравоохранения. Авторизуйтесь или зарегистрируйтесь.
Инфекции генитального тракта у женщин с верифицированной при лапароскопии патологией маточных труб и нормальными результатами лапароскопии
Инфекции генитального тракта у женщин с верифицированной при лапароскопии патологией маточных труб и нормальными результатами лапароскопии
Дубровина С.О., Aрдинцева О.А. Инфекции генитального тракта у женщин с верифицированной при лапароскопии патологией маточных труб и нормальными результатами лапароскопии. Гинекология. 2018; 20 (1): 75–77.
DOI: 10.26442/2079-5696_20.1.75-77
________________________________________________
Материалы доступны только для специалистов сферы здравоохранения. Авторизуйтесь или зарегистрируйтесь.
Аннотация
Введение. Трубный и перитонеальный фактор являются важными причинами бесплодия и воспалительных заболеваний органов малого таза (ВЗОМТ). Хорошо известно, что Neisseria gonorrhoeae и Chlamydia trachomatis – этиологические агенты тазового воспаления, ведущего к бесплодию. Существует крайне ограниченное число публикаций о том, какие представители инфекций, передаваемых половым путем (ИППП), или другие микроорганизмы могут быть обнаружены в маточных трубах во время реконструктивно-пластических операций. Знания в этой области нужны для правильного подбора антибиотикотерапии во время выполнения и после операций.
Цель исследования – определение микробного пейзажа содержимого маточных труб у бесплодных пациенток с трубно-перитонеальным фактором бесплодия, диагностированным во время лапароскопии, и с нормальными маточными трубами.
Материалы и методы. Были включены в исследование 22 женщины с бесплодием, 12 из них (основная группа) имели трубно-перитонеальную патологию, 10 женщин были без патологии маточных труб (контрольная группа). Средний возраст пациенток в первой группе составил 25 лет (20–29), в контрольной группе – 31 год (20–36). Для всех женщин лапароскопия была частью обследования по бесплодию. В 1-й группе были выделены изменения маточных труб по типу фиброза, гидросальпинкса или спаек в области периампулярного или фимбриального отдела. Во время лапароскопии маточные трубы были обмыты 2–4 мл физиологического раствора непосредственно после введения лапароскопа и лапароскопических инструментов. Через боковой троакар производился забор материала из маточных труб с помощью бактериологической петли с целью осуществления бактериологического посева. Идентификация ДНК возбудителей производилась методом полимеразной цепной реакции согласно инструкции. Идентификацию и определение чувствительности выделенных культур выполняли с использованием автоматического бактериологического анализатора Vitek 2 Сompact 30.
Результаты. У всех женщин без идентификации ИППП и ВЗОМТ в анамнезе и с отсутствием патологии маточных труб при лапароскопии (контрольная группа) мы не нашли каких-либо микроорганизмов в маточных трубах. Мы не выявили C. trachomatis, N. gonorrhoeae или Trichomonas vaginalis в маточных трубах. Однако мы обнаружили дважды Ureaplasma urealyticum в маточных трубах (16,7%), при этом в контрольной группе также был однократно выявлен этот микроорганизм. Принципиальным признаком сальпингита является экстенсивное ремоделирование тканей, приводящее к хроническим последствиям, таким как рубцевание и обструкция, во время которых ИППП и другие микроорганизмы элиминируются иммунной системой. В данном исследовании мы выявили дважды в маточных трубах U. urealyticum. Возможно, U. urealyticum персистирует после антибактериальной терапии и селективной элиминации основных патогенов, поскольку определенные антибиотики поражают клеточную стенку, отсутствующую у этого микрооорганизма.
Ключевые слова: хламидийная инфекция, бесплодие, обследование.
The purpose of our study is to determine the microbial landscape of the contents of the fallopian tubes in infertile patients with a tubal peritoneal infertility factor diagnosed during laparoscopy and normal uterine tubes.
Materials and methods. 22 women with infertility were included in the study. 12 of them (the main group) had tubal peritoneal pathology, 10 women had no pathology of the fallopian tubes (control group). The average age of patients in the first group was 25 years (20–29), in the control group – 31 years (20–36). For all women, laparoscopy was part of the infertility survey. In the 1 st group, the changes in the fallopian tubes according to the type of fibrosis, hydrosalpinx or adhesions in the region of the periampulal or fimbrial part were identified. During laparoscopy, the fallopian tubes were washed with 2–4 ml of saline immediately after laparoscopic and laparoscopic instruments. Through the lateral trocar, the material was taken from the fallopian tubes using a bacteriological loop to perform bacteriological inoculation. Identification of the DNA of the pathogens was carried out by the polymerase chain reaction method according to the instructions. Identification and sensitivity determination of the isolated cultures was performed using an automatic bacteriological analyzer Vitek 2 Compact 30.
Results. In all women without an identification of STIs and PID in the history and absence of abnormalities of the fallopian tubes in laparoscopy (control group), we did not find any microorganisms in the fallopian tubes. We did not detect C. trachomatis, N. gonorrhoeae or Trichomonas vaginalis in the fallopian tubes. However, we found twice Ureaplasma urealyticum in the fallopian tubes (16.7%), while in the control group this microorganism was also detected once. An important feature of salpingitis is extensive tissue remodeling, leading to chronic effects, such as scarring and obstruction, during which STIs and other microorganisms are eliminated by the immune system. In this study, we identified twice in the fallopian tubes of U. urealyticum. Perhaps U. urealyticum persists after antibiotic therapy and selective elimination of the main pathogens, since certain antibiotics affect the cell wall that is absent in this microorganism.
Key words: chlamydia infection, infertility, examination.
Цель исследования – определение микробного пейзажа содержимого маточных труб у бесплодных пациенток с трубно-перитонеальным фактором бесплодия, диагностированным во время лапароскопии, и с нормальными маточными трубами.
Материалы и методы. Были включены в исследование 22 женщины с бесплодием, 12 из них (основная группа) имели трубно-перитонеальную патологию, 10 женщин были без патологии маточных труб (контрольная группа). Средний возраст пациенток в первой группе составил 25 лет (20–29), в контрольной группе – 31 год (20–36). Для всех женщин лапароскопия была частью обследования по бесплодию. В 1-й группе были выделены изменения маточных труб по типу фиброза, гидросальпинкса или спаек в области периампулярного или фимбриального отдела. Во время лапароскопии маточные трубы были обмыты 2–4 мл физиологического раствора непосредственно после введения лапароскопа и лапароскопических инструментов. Через боковой троакар производился забор материала из маточных труб с помощью бактериологической петли с целью осуществления бактериологического посева. Идентификация ДНК возбудителей производилась методом полимеразной цепной реакции согласно инструкции. Идентификацию и определение чувствительности выделенных культур выполняли с использованием автоматического бактериологического анализатора Vitek 2 Сompact 30.
Результаты. У всех женщин без идентификации ИППП и ВЗОМТ в анамнезе и с отсутствием патологии маточных труб при лапароскопии (контрольная группа) мы не нашли каких-либо микроорганизмов в маточных трубах. Мы не выявили C. trachomatis, N. gonorrhoeae или Trichomonas vaginalis в маточных трубах. Однако мы обнаружили дважды Ureaplasma urealyticum в маточных трубах (16,7%), при этом в контрольной группе также был однократно выявлен этот микроорганизм. Принципиальным признаком сальпингита является экстенсивное ремоделирование тканей, приводящее к хроническим последствиям, таким как рубцевание и обструкция, во время которых ИППП и другие микроорганизмы элиминируются иммунной системой. В данном исследовании мы выявили дважды в маточных трубах U. urealyticum. Возможно, U. urealyticum персистирует после антибактериальной терапии и селективной элиминации основных патогенов, поскольку определенные антибиотики поражают клеточную стенку, отсутствующую у этого микрооорганизма.
Ключевые слова: хламидийная инфекция, бесплодие, обследование.
________________________________________________
The purpose of our study is to determine the microbial landscape of the contents of the fallopian tubes in infertile patients with a tubal peritoneal infertility factor diagnosed during laparoscopy and normal uterine tubes.
Materials and methods. 22 women with infertility were included in the study. 12 of them (the main group) had tubal peritoneal pathology, 10 women had no pathology of the fallopian tubes (control group). The average age of patients in the first group was 25 years (20–29), in the control group – 31 years (20–36). For all women, laparoscopy was part of the infertility survey. In the 1 st group, the changes in the fallopian tubes according to the type of fibrosis, hydrosalpinx or adhesions in the region of the periampulal or fimbrial part were identified. During laparoscopy, the fallopian tubes were washed with 2–4 ml of saline immediately after laparoscopic and laparoscopic instruments. Through the lateral trocar, the material was taken from the fallopian tubes using a bacteriological loop to perform bacteriological inoculation. Identification of the DNA of the pathogens was carried out by the polymerase chain reaction method according to the instructions. Identification and sensitivity determination of the isolated cultures was performed using an automatic bacteriological analyzer Vitek 2 Compact 30.
Results. In all women without an identification of STIs and PID in the history and absence of abnormalities of the fallopian tubes in laparoscopy (control group), we did not find any microorganisms in the fallopian tubes. We did not detect C. trachomatis, N. gonorrhoeae or Trichomonas vaginalis in the fallopian tubes. However, we found twice Ureaplasma urealyticum in the fallopian tubes (16.7%), while in the control group this microorganism was also detected once. An important feature of salpingitis is extensive tissue remodeling, leading to chronic effects, such as scarring and obstruction, during which STIs and other microorganisms are eliminated by the immune system. In this study, we identified twice in the fallopian tubes of U. urealyticum. Perhaps U. urealyticum persists after antibiotic therapy and selective elimination of the main pathogens, since certain antibiotics affect the cell wall that is absent in this microorganism.
Key words: chlamydia infection, infertility, examination.
Полный текст
Список литературы
1. Macular M, Wright-Schnapps TJ, Chandra A et al. A public health focus on infertility prevention, detection, and management. Fertil Steril 2010; 93: 16,e1–0.
2. Pellati D, Mylonakis I, Bertoloni G et al. Genital tract infections and infertility. Eur J Obstet General Reprod Biol 2008; 140: 3–11.
3. Svenstrup HF, Fedder J, Kristofferson SE et al. Mycoplasma genitalium, Chlamydia trachomatis, and tubal factor infertility – a prospective study. Fertil Steril 2008; 90: 513–20.
4. Costoya A, Morales F, Borda P et al. Mycoplasmateceae species are not found in Fallopian tubes of women with tuba-peritoneal infertility. Braz J Infect Dis 2012; 16 (3): 273–8.
5. CDC. Sexually transmitted diseases. Treatment guidelines. MMWR 2015; 64 (3): 1–140.
6. Amirmozafari N, Mirnejad R, Kazemi B et al. Comparison of polymerase chain reaction and culture for detection of genital mycoplasma in clinical samples from patients with genital infections. Saudi Med J 2009; 30: 1401–5.
7. Grześ́́ko J, Elias M, Maczyn ́ska B et al. Occurrence of Mycoplasma genitalium in fertile and infertile women. Fertil Steril 2009; 91: 2376–80.
8. Höglund P, Kärre K, Klein G. The uterine cervix – a new member of the family of immunologically exceptional sites? Cancer Immun 2003; 3: 6.
9. Green DR, Ferguson TA. The role of Fas ligand in immune privilege. Nat Rev Mol Cell Biol 2001; 2: 917–24.
10. Dubrovina S, Lesovaya V. Deoxyribonucleic acid of different sexual transmitted infections in the Fallopian tubes of patients with ectopic pregnancy. In: Proceedings of the 13th International Symposium on Human Chlamydial Infections. Asilomar Conference Grounds, Pacific Grove, California, June 22–27, 2014. San Francisco, 2014; p. 375–8.
11. Geisler WM, Morrison SC, Doemland ML et al. Immunoglobulin-specific responses to Chlamydia elementary bodies in individuals with and at risk for genital Chlamydial infection. J Infect Dis 2012; 206 (12): 1836–43.
12. Branković I, van Ess EF, Noz MP et al. NOD1 in contrast to NOD2 functional polymorphism influence Chlamydia trachoma’s infection and the risk of tubal factor infertility. Pathog Dis 2015; 73 (1): 1–9.
2. Pellati D, Mylonakis I, Bertoloni G et al. Genital tract infections and infertility. Eur J Obstet General Reprod Biol 2008; 140: 3–11.
3. Svenstrup HF, Fedder J, Kristofferson SE et al. Mycoplasma genitalium, Chlamydia trachomatis, and tubal factor infertility – a prospective study. Fertil Steril 2008; 90: 513–20.
4. Costoya A, Morales F, Borda P et al. Mycoplasmateceae species are not found in Fallopian tubes of women with tuba-peritoneal infertility. Braz J Infect Dis 2012; 16 (3): 273–8.
5. CDC. Sexually transmitted diseases. Treatment guidelines. MMWR 2015; 64 (3): 1–140.
6. Amirmozafari N, Mirnejad R, Kazemi B et al. Comparison of polymerase chain reaction and culture for detection of genital mycoplasma in clinical samples from patients with genital infections. Saudi Med J 2009; 30: 1401–5.
7. Grześ́́ko J, Elias M, Maczyn ́ska B et al. Occurrence of Mycoplasma genitalium in fertile and infertile women. Fertil Steril 2009; 91: 2376–80.
8. Höglund P, Kärre K, Klein G. The uterine cervix – a new member of the family of immunologically exceptional sites? Cancer Immun 2003; 3: 6.
9. Green DR, Ferguson TA. The role of Fas ligand in immune privilege. Nat Rev Mol Cell Biol 2001; 2: 917–24.
10. Dubrovina S, Lesovaya V. Deoxyribonucleic acid of different sexual transmitted infections in the Fallopian tubes of patients with ectopic pregnancy. In: Proceedings of the 13th International Symposium on Human Chlamydial Infections. Asilomar Conference Grounds, Pacific Grove, California, June 22–27, 2014. San Francisco, 2014; p. 375–8.
11. Geisler WM, Morrison SC, Doemland ML et al. Immunoglobulin-specific responses to Chlamydia elementary bodies in individuals with and at risk for genital Chlamydial infection. J Infect Dis 2012; 206 (12): 1836–43.
12. Branković I, van Ess EF, Noz MP et al. NOD1 in contrast to NOD2 functional polymorphism influence Chlamydia trachoma’s infection and the risk of tubal factor infertility. Pathog Dis 2015; 73 (1): 1–9.
2. Pellati D, Mylonakis I, Bertoloni G et al. Genital tract infections and infertility. Eur J Obstet General Reprod Biol 2008; 140: 3–11.
3. Svenstrup HF, Fedder J, Kristofferson SE et al. Mycoplasma genitalium, Chlamydia trachomatis, and tubal factor infertility – a prospective study. Fertil Steril 2008; 90: 513–20.
4. Costoya A, Morales F, Borda P et al. Mycoplasmateceae species are not found in Fallopian tubes of women with tuba-peritoneal infertility. Braz J Infect Dis 2012; 16 (3): 273–8.
5. CDC. Sexually transmitted diseases. Treatment guidelines. MMWR 2015; 64 (3): 1–140.
6. Amirmozafari N, Mirnejad R, Kazemi B et al. Comparison of polymerase chain reaction and culture for detection of genital mycoplasma in clinical samples from patients with genital infections. Saudi Med J 2009; 30: 1401–5.
7. Grześ́́ko J, Elias M, Maczyn ́ska B et al. Occurrence of Mycoplasma genitalium in fertile and infertile women. Fertil Steril 2009; 91: 2376–80.
8. Höglund P, Kärre K, Klein G. The uterine cervix – a new member of the family of immunologically exceptional sites? Cancer Immun 2003; 3: 6.
9. Green DR, Ferguson TA. The role of Fas ligand in immune privilege. Nat Rev Mol Cell Biol 2001; 2: 917–24.
10. Dubrovina S, Lesovaya V. Deoxyribonucleic acid of different sexual transmitted infections in the Fallopian tubes of patients with ectopic pregnancy. In: Proceedings of the 13th International Symposium on Human Chlamydial Infections. Asilomar Conference Grounds, Pacific Grove, California, June 22–27, 2014. San Francisco, 2014; p. 375–8.
11. Geisler WM, Morrison SC, Doemland ML et al. Immunoglobulin-specific responses to Chlamydia elementary bodies in individuals with and at risk for genital Chlamydial infection. J Infect Dis 2012; 206 (12): 1836–43.
12. Branković I, van Ess EF, Noz MP et al. NOD1 in contrast to NOD2 functional polymorphism influence Chlamydia trachoma’s infection and the risk of tubal factor infertility. Pathog Dis 2015; 73 (1): 1–9.
________________________________________________
2. Pellati D, Mylonakis I, Bertoloni G et al. Genital tract infections and infertility. Eur J Obstet General Reprod Biol 2008; 140: 3–11.
3. Svenstrup HF, Fedder J, Kristofferson SE et al. Mycoplasma genitalium, Chlamydia trachomatis, and tubal factor infertility – a prospective study. Fertil Steril 2008; 90: 513–20.
4. Costoya A, Morales F, Borda P et al. Mycoplasmateceae species are not found in Fallopian tubes of women with tuba-peritoneal infertility. Braz J Infect Dis 2012; 16 (3): 273–8.
5. CDC. Sexually transmitted diseases. Treatment guidelines. MMWR 2015; 64 (3): 1–140.
6. Amirmozafari N, Mirnejad R, Kazemi B et al. Comparison of polymerase chain reaction and culture for detection of genital mycoplasma in clinical samples from patients with genital infections. Saudi Med J 2009; 30: 1401–5.
7. Grześ́́ko J, Elias M, Maczyn ́ska B et al. Occurrence of Mycoplasma genitalium in fertile and infertile women. Fertil Steril 2009; 91: 2376–80.
8. Höglund P, Kärre K, Klein G. The uterine cervix – a new member of the family of immunologically exceptional sites? Cancer Immun 2003; 3: 6.
9. Green DR, Ferguson TA. The role of Fas ligand in immune privilege. Nat Rev Mol Cell Biol 2001; 2: 917–24.
10. Dubrovina S, Lesovaya V. Deoxyribonucleic acid of different sexual transmitted infections in the Fallopian tubes of patients with ectopic pregnancy. In: Proceedings of the 13th International Symposium on Human Chlamydial Infections. Asilomar Conference Grounds, Pacific Grove, California, June 22–27, 2014. San Francisco, 2014; p. 375–8.
11. Geisler WM, Morrison SC, Doemland ML et al. Immunoglobulin-specific responses to Chlamydia elementary bodies in individuals with and at risk for genital Chlamydial infection. J Infect Dis 2012; 206 (12): 1836–43.
12. Branković I, van Ess EF, Noz MP et al. NOD1 in contrast to NOD2 functional polymorphism influence Chlamydia trachoma’s infection and the risk of tubal factor infertility. Pathog Dis 2015; 73 (1): 1–9.
Авторы
С.О.Дубровина*, О.А.Aрдинцева
ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава России. 344022, Россия, Ростов-на-Дону, Нахичеванский пер., д. 29
*S.dubrovina@gmail.com
Rostov State Medical University of the Ministry of Health of the Russian Federation. 344022, Russian Federation, Rostov-on-Don, per. Nakhichevanskii, d. 29
*S.dubrovina@gmail.com
ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава России. 344022, Россия, Ростов-на-Дону, Нахичеванский пер., д. 29
*S.dubrovina@gmail.com
________________________________________________
Rostov State Medical University of the Ministry of Health of the Russian Federation. 344022, Russian Federation, Rostov-on-Don, per. Nakhichevanskii, d. 29
*S.dubrovina@gmail.com
Цель портала OmniDoctor – предоставление профессиональной информации врачам, провизорам и фармацевтам.