Возможности квадриполярной радиочастотной терапии как метода реабилитации после операций по поводу пролапса тазовых органов
Возможности квадриполярной радиочастотной терапии как метода реабилитации после операций по поводу пролапса тазовых органов
Доброхотова Ю.Э., Гришин И.И., Ильина И.Ю., Карева Е.Н., Залесская С.А., Нагиева Т.С., Комагоров В.И., Гришин А.И., Шадрова П.А., Азимова А.Ю. Возможности квадриполярной радиочастотной терапии как метода реабилитации после операций по поводу пролапса тазовых органов. Гинекология. 2021;23(6):529–535. DOI: 10.26442/20795696.2021.6.201308
________________________________________________
Dobrokhotova YuE, Grishin II, Il'ina IIu, Kareva EN, Zalesskaya SA, Nagieva TS, Komagorov VI, Grishin AI, Shadrova PA, Azimova AIu. Possibilities of quadripolar radiofrequency therapy as a method of rehabilitation after surgery for pelvic organ prolapse. Gynecology. 2021;23(6):529–535. DOI: 10.26442/20795696.2021.6.201308
Возможности квадриполярной радиочастотной терапии как метода реабилитации после операций по поводу пролапса тазовых органов
Доброхотова Ю.Э., Гришин И.И., Ильина И.Ю., Карева Е.Н., Залесская С.А., Нагиева Т.С., Комагоров В.И., Гришин А.И., Шадрова П.А., Азимова А.Ю. Возможности квадриполярной радиочастотной терапии как метода реабилитации после операций по поводу пролапса тазовых органов. Гинекология. 2021;23(6):529–535. DOI: 10.26442/20795696.2021.6.201308
________________________________________________
Dobrokhotova YuE, Grishin II, Il'ina IIu, Kareva EN, Zalesskaya SA, Nagieva TS, Komagorov VI, Grishin AI, Shadrova PA, Azimova AIu. Possibilities of quadripolar radiofrequency therapy as a method of rehabilitation after surgery for pelvic organ prolapse. Gynecology. 2021;23(6):529–535. DOI: 10.26442/20795696.2021.6.201308
Обоснование. Статья посвящена актуальной теме в гинекологии – пролапсу гениталий и методам профилактики развития рецидива в послеоперационном периоде. Несмотря на развитие хирургии в области коррекции генитального пролапса, до 13% пациенток нуждаются в повторном оперативном лечении в связи с рецидивом данной патологии в послеоперационном периоде. Цель. В настоящее время до сих пор не разработан единый алгоритм реабилитации после операций по устранению данной патологии. Нами предложена методика использования квадриполярной радиочастотной терапии у пациенток, оперированных по поводу пролапса тазовых органов, в послеоперационном периоде с целью улучшения периода реабилитации. Материалы и методы. Для реализации наших целей произведен забор гистологического материала у 60 пациенток, страдающих пролапсом тазовых органов, до и после оперативного лечения для оценки интенсивности коллагеногенеза и репаративных процессов в соединительной ткани влагалища на основании изменений экспрессии матричной РНК коллагенов I и III типа, генов, кодирующих сосудистый эндотелиальный фактор роста VEGF-A, трансформирующий фактор роста ТФР-B1 и декорин, методом полимеразной цепной реакции. Для анализа качества сексуальной жизни пациенток применялась анкета FSFI-19. Также мы рассчитали индекс вагинального здоровья пациенток, страдающих данным заболеванием. Результаты. В процессе исследования выявлено, что при использовании данной методики происходит полная реэпителизация тканей к 90-му дню после операции, интенсифицируются обменно-трофические процессы в тканях урогенитального тракта, повышается степень удовлетворенности пациенток качеством сексуальной жизни. Заключение. Все полученные результаты подтверждают терапевтический эффект радиочастотной терапии в послеоперационном периоде, что дает возможность использовать данную методику в качестве реабилитационной программы после хирургического лечения по поводу пролапса гениталий.
Background. This article is devoted to a topical topic in gynecology – genital prolapse and methods of preventing recurrence in the postoperative period. Despite the surgery in the field of correction of genital prolapse, up to 13% of patients require repeated surgical treatment of this pathology in the postoperative period. Aim. At present, a unified algorithm for rehabilitation after operations to eliminate this pathology has not yet been developed. We proposed a technique for using quadripolar radiofrequency therapy in patients operated on for pelvic organ prolapse in the postoperative period in order to improve the rehabilitation period. Materials and methods. To achieve our goals, histological material was collected from 60 patients with pelvic organ prolapse before and after surgical treatment to assess the strength of collagenogenesis and reparative processes in the connective tissue of the vagina based on changes in the expression of the RNA matrix of collagen types I and III, genes encoding vascular endothelial growth factor VEGF-A, transforming growth factor TGF-B1 and decorin by polymerase chain reaction. The FSFI-19 questionnaire was used to analyze the quality of the patients' sexual life. We also calculated the vagina health index of patients suffering from this disease. Results. In the course of the study, it was revealed that when using this method, complete re-epithelization of tissues occurs by 90 days after the operation, metabolic and trophic processes in the tissues of the urogenital tract intensify, and an increased degree of patient satisfaction with the quality of sexual life. Conclusion. All the results obtained confirmed the therapeutic effect of radiofrequency therapy in the postoperative period, which makes it possible to use the technique as a rehabilitation program after surgical treatment for genital prolapse.
1. Barber MD, Maher C. Epidemiology and Outcome Assessment of Pelvic Organ Prolapse. Int Urogynecol J. 2013;24(11):1783-90.
DOI:10.1007/s00192-013-2169-9
2. Pelvic Organ Prolapse: ACOG Practice Bulletin, Number 214. Obstet Gynecol. 2019;25(6):397-408. DOI:10.1097/AOG.0000000000003519
3. Maher C, Feiner B, Baessler K, Christmann-Schmid C. Surgery for women with apical vaginal prolapse. Cochrane Database Syst Rev. 2016;10(10):СD012376. DOI:10.1002/14651858.CD012376
4. Kastelein AW, Diedrich CM, Jansen C, Zwolsman SE. Validation of noninvasive focal depth measurements to determine epithelial thickness of the vaginal wall. Menopause. 2019;26(10):1160-5. DOI:10.1097/GME.0000000000001369
5. Trutnovsky G, Guzman-Rojas R, Martin A, Dietz HP. Pelvic floor dysfunction – does menopause duration matter? Maturitas. 2013;76(2):134-8. DOI:10.1016/j.maturitas.2013.06.012
6. Weintraub AY, Glinter H, Marcus-Braun N. Narrative review of the epidemiology, diagnosis and pathophysiology of pelvic organ prolapse. Int Braz J Urol. 2020;46(1):5-14. DOI:10.1590/S1677-5538.IBJU.2018.0581
7. Радзинский В.Е., Ханзадян М.Л., Демура Т.А., Коннон Р. Особенности накопления коллагенов I и III типов и эластина в связочном аппарате матки при пролапсах гениталий (иммуногистохимические исследования). Медицинский вестник Юга России. 2014;4:95-100 [Radzinskij VE, Hanzadyan ML, Demura TA, Konnon R. Features of the accumulation of types I and III collagens and elastin in the ligamentous apparatus of the uterus during genital prolapses (immunohistochemical studies). Medical Bulletin of the South of Russia. 2014;4:95-100 (in Russian)].
8. Kastelein AW, Diedrich CM, de Waal L, et al. The vaginal microcirculation after prolapse surgery. Neurourol Urodyn. 2020;39(1):331-8.
DOI:10.1002/nau.24203
9. De Landsheere L, Munaut C, Nusgens B, et al. Histology of the vaginal wall in women with pelvic organ prolapse: a literature review. Int Urogynecol J. 2013;24(12):2011-20. DOI:10.1007/s00192-013-2111-1
10. Gong R, Xia Z. Collagen changes in pelvic support tissues in women with pelvic organ prolapse. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2019;234:185-9. DOI:10.1016/j.ejogrb.2019.01.012
11. Краснопольская И.В., Попов А.А., Горина Н.В. Экспрессия генов белков метаболизма коллагена в парауретральной соединительной ткани у женщин с недержанием мочи и пролапсом органов малого таза. Российский вестник акушера-гинеколога. 2015;15(6):36-41 [Krasnopolskya IV, Popov AA, Gorina NV. Gene expression of collagen metabolic proteins in the paraurethral connective tissue of women with urinary incontinence and small pelvic organ prolapse. Russian Bulletin of Obstetrician-Gynecologist. 2015;15(6):36-41 (in Russian)].
12. De Landsheere L, Munaut C, Nusgens B, et al. Histology of the vaginal wall in women with pelvic organ prolapse: a literature review. Int Urogynecol J. 2013;24(12):2011-20.
13. Bentov I, Reed MJ. Anesthesia, microcirculation, and wound repair in aging. Anesthesiology. 2014;120(3):760-72. DOI:10.1097/ALN.0000000000000036
14. Казакова С.Н., Аполихина И.А., Тетерина Т.А., Паузина О.А. Современный подход к терапии синдрома релаксированного влагалища. Медицинский оппонент. 2020;2(10):58-64 [Kazakova SN, Apolihina IA, Teterina TA, Pauzina OA. A modern approach to the therapy of the relaxed vagina syndrome. Medical Opponent. 2020;2(10):58-64 (in Russian)].
15. Доброхотова Ю.Э., Нагиева Т.С., Карева Е.Н. Фокусированное радиочастотное лечение синдрома релаксированного влагалища в послеродовом периоде. Акушерство, гинекология и репродукция. 2020;14(4):437-48 [Dobrohotova YuE, Nagieva TS, Kareva EN. Focused radiofrequency treatment of the relaxed vagina syndrome in the postpartum period. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2020;14(4):437-48 (in Russian)].
16. Bhattarai A, Staat M. Modelling of Soft Connective Tissues to Investigate Female Pelvic Floor Dysfunctions. Comput Math Methods Med. 2018;2018:9518076. DOI:10.1155/2018/9518076
17. Liu C, Wang Y, Li BS, et al. Role of transforming growth factor β 1 in the pathogenesis of pelvic organ prolapse: A potential therapeutic target. Int J Mol Med. 201;40(2):347-56.
18. Vetuschi A, Pompili S, Gallone A, et al. Immunolocalization of Advanced Glycation End Products, Mitogen Activated Protein Kinases, and Transforming Growth Factor-β/Smads in Pelvic Organ Prolapse. J Histochem Cytochem. 2018;66(9):673-86.
19. Кругликов И. Неоколлагеногенез: физиологический механизм и эффективность процедур. Les nouvelles esthetiques. 2013;5:32-8
[Kruglikov I. Neokollagenogenez: fiziologicheskii mekhanizm i effektivnost' protsedur. Les nouvelles esthetiques. 2013;5:32-8 (in Russian)].
20. Wang S, Lü D, Zhang Z. Effects of mechanical stretching on the morphology of extracellular polymers and the mRNA expression of collagens and small leucine-rich repeat proteoglycans in vaginal fibroblasts from women with pelvic organ prolapse. PLoS One. 2018;13(4):e0193456.
________________________________________________
1. Barber MD, Maher C. Epidemiology and Outcome Assessment of Pelvic Organ Prolapse. Int Urogynecol J. 2013;24(11):1783-90.
DOI:10.1007/s00192-013-2169-9
2. Pelvic Organ Prolapse: ACOG Practice Bulletin, Number 214. Obstet Gynecol. 2019;25(6):397-408. DOI:10.1097/AOG.0000000000003519
3. Maher C, Feiner B, Baessler K, Christmann-Schmid C. Surgery for women with apical vaginal prolapse. Cochrane Database Syst Rev. 2016;10(10):СD012376. DOI:10.1002/14651858.CD012376
4. Kastelein AW, Diedrich CM, Jansen C, Zwolsman SE. Validation of noninvasive focal depth measurements to determine epithelial thickness of the vaginal wall. Menopause. 2019;26(10):1160-5. DOI:10.1097/GME.0000000000001369
5. Trutnovsky G, Guzman-Rojas R, Martin A, Dietz HP. Pelvic floor dysfunction – does menopause duration matter? Maturitas. 2013;76(2):134-8. DOI:10.1016/j.maturitas.2013.06.012
6. Weintraub AY, Glinter H, Marcus-Braun N. Narrative review of the epidemiology, diagnosis and pathophysiology of pelvic organ prolapse. Int Braz J Urol. 2020;46(1):5-14. DOI:10.1590/S1677-5538.IBJU.2018.0581
7. Radzinskij VE, Hanzadyan ML, Demura TA, Konnon R. Features of the accumulation of types I and III collagens and elastin in the ligamentous apparatus of the uterus during genital prolapses (immunohistochemical studies). Medical Bulletin of the South of Russia. 2014;4:95-100 (in Russian).
8. Kastelein AW, Diedrich CM, de Waal L, et al. The vaginal microcirculation after prolapse surgery. Neurourol Urodyn. 2020;39(1):331-8.
DOI:10.1002/nau.24203
9. De Landsheere L, Munaut C, Nusgens B, et al. Histology of the vaginal wall in women with pelvic organ prolapse: a literature review. Int Urogynecol J. 2013;24(12):2011-20. DOI:10.1007/s00192-013-2111-1
10. Gong R, Xia Z. Collagen changes in pelvic support tissues in women with pelvic organ prolapse. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2019;234:185-9. DOI:10.1016/j.ejogrb.2019.01.012
11. Krasnopolskya IV, Popov AA, Gorina NV. Gene expression of collagen metabolic proteins in the paraurethral connective tissue of women with urinary incontinence and small pelvic organ prolapse. Russian Bulletin of Obstetrician-Gynecologist. 2015;15(6):36-41 (in Russian).
12. De Landsheere L, Munaut C, Nusgens B, et al. Histology of the vaginal wall in women with pelvic organ prolapse: a literature review. Int Urogynecol J. 2013;24(12):2011-20.
13. Bentov I, Reed MJ. Anesthesia, microcirculation, and wound repair in aging. Anesthesiology. 2014;120(3):760-72. DOI:10.1097/ALN.0000000000000036
14. Kazakova SN, Apolihina IA, Teterina TA, Pauzina OA. A modern approach to the therapy of the relaxed vagina syndrome. Medical Opponent. 2020;2(10):58-64 (in Russian).
15. Dobrohotova YuE, Nagieva TS, Kareva EN. Focused radiofrequency treatment of the relaxed vagina syndrome in the postpartum period. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2020;14(4):437-48 (in Russian).
16. Bhattarai A, Staat M. Modelling of Soft Connective Tissues to Investigate Female Pelvic Floor Dysfunctions. Comput Math Methods Med. 2018;2018:9518076. DOI:10.1155/2018/9518076
17. Liu C, Wang Y, Li BS, et al. Role of transforming growth factor β 1 in the pathogenesis of pelvic organ prolapse: A potential therapeutic target. Int J Mol Med. 201;40(2):347-56.
18. Vetuschi A, Pompili S, Gallone A, et al. Immunolocalization of Advanced Glycation End Products, Mitogen Activated Protein Kinases, and Transforming Growth Factor-β/Smads in Pelvic Organ Prolapse. J Histochem Cytochem. 2018;66(9):673-86.
19. Kruglikov I. Neokollagenogenez: fiziologicheskii mekhanizm i effektivnost' protsedur. Les nouvelles esthetiques. 2013;5:32-8 (in Russian).
20. Wang S, Lü D, Zhang Z. Effects of mechanical stretching on the morphology of extracellular polymers and the mRNA expression of collagens and small leucine-rich repeat proteoglycans in vaginal fibroblasts from women with pelvic organ prolapse. PLoS One. 2018;13(4):e0193456.
ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России, Москва, Россия
*sofa.zalesskaya@mail.ru
________________________________________________
Yulia E. Dobrokhotova*, Igor I. Grishin, Irina Iu. Il'ina, Elena N. Kareva, Sofia A. Zalesskaya, Tamara S. Nagieva, Vladimir I. Komagorov, Aleksandr I. Grishin, Polina A. Shadrova, Amina Iu. Azimova
Pirogov Russian National Research Medical University, Moscow, Russia
*sofa.zalesskaya@mail.ru