Материалы доступны только для специалистов сферы здравоохранения.
Чтобы посмотреть материал полностью
Авторизуйтесь
или зарегистрируйтесь.
Коррекция окислительного стресса препаратами на основе глутатиона при гиперпролиферативных заболеваниях у женщин, проживающих на радиационно загрязненных территориях
Коррекция окислительного стресса препаратами на основе глутатиона при гиперпролиферативных заболеваниях у женщин, проживающих на радиационно загрязненных территориях
Крикунова Л.И., Мкртчян Л.С., Замулаева И.А., Якимова А.О., Дзиковская Л.А., Дегтярева Е.С., Хайлова Ж.В., Иванов С.А., Каприн А.Д. Коррекция окислительного стресса препаратами на основе глутатиона при гиперпролиферативных заболеваниях у женщин, проживающих на радиационно загрязненных территориях. Гинекология. 2025;27(2):121–128. DOI: 10.26442/20795696.2025.2.203292
© ООО «КОНСИЛИУМ МЕДИКУМ», 2025 г.
© ООО «КОНСИЛИУМ МЕДИКУМ», 2025 г.
________________________________________________
Материалы доступны только для специалистов сферы здравоохранения.
Чтобы посмотреть материал полностью
Авторизуйтесь
или зарегистрируйтесь.
Аннотация
Обоснование. Женщины, проживающие на загрязненных радионуклидами вследствие аварии на Чернобыльской атомной электростанции территориях Российской Федерации, подвергаются воздействию комплекса экологических, психологических и социально-экономических факторов. Высокий уровень распространенности гиперпролиферативных заболеваний (ГПЗ), зарегистрированный у данного контингента, может быть обусловлен в том числе окислительным стрессом организма, инициирующим процессы канцерогенеза. В этих условиях поиск средств, корригирующих антиоксидантную систему, может явиться не только эффективной стратегией негормональной сопроводительной терапии, но и залогом патогенетической профилактики злокачественных новообразований.
Цель. Изучение эффективности липосомального глутатиона в коррекции окислительного стресса у проживающих на радиационно загрязненных территориях женщин и возможности его применения при сопроводительной терапии ГПЗ репродуктивной системы и щитовидной железы (ЩЖ).
Материалы и методы. В исследование включены 25 женщин, проживающих на загрязненных радионуклидами территориях РФ, с ГПЗ репродуктивной системы и ЩЖ: доброкачественной дисплазией молочной железы (МЖ), аденомиозом, миомой матки, хроническим аутоиммунным тиреоидитом и др. Всем больным проводили сопроводительную терапию липосомальным глутатионом (ООО «Смартлайф») в разовой дозе 150 мг ежедневно в течение 60 дней. На фоне приема препарата проведено изучение клинико-радиологической динамики патологического процесса, а также показателей оксидативной системы организма – малонового диальдегида и общей антиоксидативной активности.
Результаты. Показано, что на фоне приема препарата в плазме крови отмечается снижение повышенных концентраций маркера окислительного стресса – малонового диальдегида (p=0,000036) и увеличение общей антиоксидантной активности (p=0,022), что сопровождается уменьшением количества случаев хронического аутоиммунного тиреоидита (p=0,021), диффузных доброкачественных дисплазий МЖ (р<0,001), а также частичной регрессией внутреннего эндометриоза (р<0,001).
Заключение. Применение липосомального глутатиона у женщин с сочетанной патологией ЩЖ и МЖ с эстрогензависимыми гинекологическими заболеваниями и без таковых способствовало снижению уровня воспаления, что привело к благоприятному исходу лечения. Полученные данные показывают перспективность дальнейших исследований для оценки эффективности использования подобных универсальных антиоксидантных средств при состояниях организма, сопровождающихся окислительным стрессом: инволютивных изменениях, ожирении, неблагоприятных условиях внешней среды, хронических ановуляторных состояниях, персистирующей инфекции вируса папилломы человека, хроническом стрессе и др.
Ключевые слова: окислительный стресс, глутатион, гиперпролиферативное заболевание, доброкачественная дисплазия молочной железы, аденомиоз, хронический аутоиммунный тиреоидит, вирус папилломы человека, малоновый диальдегид, общая антиоксидантная активность
Aim. To study the effectiveness of liposomal glutathione in the correction of oxidative stress in women living in radiation-contaminated areas and the possibility of its use in the supportive therapy of HPD of the reproductive system and thyroid gland.
Materials and methods. The study included 25 women living in radionuclide-contaminated areas of the Russian Federation with HPD of the reproductive system and thyroid gland: benign mammary dysplasia, adenomyosis, uterine fibroids, chronic autoimmune thyroiditis, etc. All patients received supportive therapy with liposomal glutathione (Smartlife LLC) at 150 mg daily for 60 days. During the therapy, the clinical and radiological change of the pathological process, as well as indicators of the oxidative system of the body – malonic dialdehyde and general antioxidative activity – were studied.
Results. It was shown that during the therapy with the drug, in the blood plasma, there was a decrease in elevated concentrations of the oxidative stress marker, malonic dialdehyde (p=0.000036), and an increase in total antioxidant activity (p=0.022), which was associated with a decrease in the number of cases of chronic autoimmune thyroiditis (p=0.021), diffuse benign mammary dysplasia (p<0.001), as well as partial regression of internal endometriosis (p<0.001).
Conclusion. The use of liposomal glutathione in women with combined thyroid and breast diseases, with and without estrogen-dependent gynecological diseases, contributed to a decrease in the level of inflammation, which led to a favorable treatment outcome. The data obtained show the prospects of further research to assess the effectiveness of such universal antioxidants in cases of oxidative stress: involutive changes, obesity, adverse environmental conditions, chronic anovulatory conditions, persistent infection of the human papillomavirus, chronic stress, etc.
Keywords: oxidative stress, glutathione, hyperproliferative disease, benign mammary dysplasia, adenomyosis, chronic autoimmune thyroiditis, human papillomavirus, malonic dialdehyde, total antioxidant activity
Цель. Изучение эффективности липосомального глутатиона в коррекции окислительного стресса у проживающих на радиационно загрязненных территориях женщин и возможности его применения при сопроводительной терапии ГПЗ репродуктивной системы и щитовидной железы (ЩЖ).
Материалы и методы. В исследование включены 25 женщин, проживающих на загрязненных радионуклидами территориях РФ, с ГПЗ репродуктивной системы и ЩЖ: доброкачественной дисплазией молочной железы (МЖ), аденомиозом, миомой матки, хроническим аутоиммунным тиреоидитом и др. Всем больным проводили сопроводительную терапию липосомальным глутатионом (ООО «Смартлайф») в разовой дозе 150 мг ежедневно в течение 60 дней. На фоне приема препарата проведено изучение клинико-радиологической динамики патологического процесса, а также показателей оксидативной системы организма – малонового диальдегида и общей антиоксидативной активности.
Результаты. Показано, что на фоне приема препарата в плазме крови отмечается снижение повышенных концентраций маркера окислительного стресса – малонового диальдегида (p=0,000036) и увеличение общей антиоксидантной активности (p=0,022), что сопровождается уменьшением количества случаев хронического аутоиммунного тиреоидита (p=0,021), диффузных доброкачественных дисплазий МЖ (р<0,001), а также частичной регрессией внутреннего эндометриоза (р<0,001).
Заключение. Применение липосомального глутатиона у женщин с сочетанной патологией ЩЖ и МЖ с эстрогензависимыми гинекологическими заболеваниями и без таковых способствовало снижению уровня воспаления, что привело к благоприятному исходу лечения. Полученные данные показывают перспективность дальнейших исследований для оценки эффективности использования подобных универсальных антиоксидантных средств при состояниях организма, сопровождающихся окислительным стрессом: инволютивных изменениях, ожирении, неблагоприятных условиях внешней среды, хронических ановуляторных состояниях, персистирующей инфекции вируса папилломы человека, хроническом стрессе и др.
Ключевые слова: окислительный стресс, глутатион, гиперпролиферативное заболевание, доброкачественная дисплазия молочной железы, аденомиоз, хронический аутоиммунный тиреоидит, вирус папилломы человека, малоновый диальдегид, общая антиоксидантная активность
________________________________________________
Aim. To study the effectiveness of liposomal glutathione in the correction of oxidative stress in women living in radiation-contaminated areas and the possibility of its use in the supportive therapy of HPD of the reproductive system and thyroid gland.
Materials and methods. The study included 25 women living in radionuclide-contaminated areas of the Russian Federation with HPD of the reproductive system and thyroid gland: benign mammary dysplasia, adenomyosis, uterine fibroids, chronic autoimmune thyroiditis, etc. All patients received supportive therapy with liposomal glutathione (Smartlife LLC) at 150 mg daily for 60 days. During the therapy, the clinical and radiological change of the pathological process, as well as indicators of the oxidative system of the body – malonic dialdehyde and general antioxidative activity – were studied.
Results. It was shown that during the therapy with the drug, in the blood plasma, there was a decrease in elevated concentrations of the oxidative stress marker, malonic dialdehyde (p=0.000036), and an increase in total antioxidant activity (p=0.022), which was associated with a decrease in the number of cases of chronic autoimmune thyroiditis (p=0.021), diffuse benign mammary dysplasia (p<0.001), as well as partial regression of internal endometriosis (p<0.001).
Conclusion. The use of liposomal glutathione in women with combined thyroid and breast diseases, with and without estrogen-dependent gynecological diseases, contributed to a decrease in the level of inflammation, which led to a favorable treatment outcome. The data obtained show the prospects of further research to assess the effectiveness of such universal antioxidants in cases of oxidative stress: involutive changes, obesity, adverse environmental conditions, chronic anovulatory conditions, persistent infection of the human papillomavirus, chronic stress, etc.
Keywords: oxidative stress, glutathione, hyperproliferative disease, benign mammary dysplasia, adenomyosis, chronic autoimmune thyroiditis, human papillomavirus, malonic dialdehyde, total antioxidant activity
Полный текст
Список литературы
1. Крикунова Л.И., Мкртчян Л.С., Замулаева И.А., и др. Роль специализированной и высокотехнологичной медицинской помощи в выявлении и профилактике онкопатологии гинекологической сферы. В кн.: Медицинские радиологические последствия Чернобыля: прогноз и фактические данные спустя 30 лет. Под. ред. В.К. Иванова, А.Д. Каприна. М.: ГЕОС, 2015 [Krikunova LI, Mkrtchian LS, Zamulaeva IA, et al. Rol' spetsializirovannoi i vysokotekhnologichnoi meditsinskoi pomoshchi v vyiavlenii i profilaktike onkopatologii ginekologicheskoi sfery. V kn.: Meditsinskie radiologicheskie posledstviia Chernobylia: prognoz i fakticheskie dannye spustia 30 let. Pod. red. VK Ivanova, AD Kaprina. Moscow: GEOS, 2015 (in Russian)].
2. Иванова Т.И., Дзиковская Л.А., Хорохорина В.А., и др. Уровень малондиальдегида в крови женщин, подвергшихся радиационному воздействию в результате чернобыльской аварии. Радиация и риск. 2023;32(4):79-93 [Ivanova TI, Dzikovskaya LA, Khorokhorina VA, et al. Malondialdehyde levels in the blood of women exposed to radiation as a result of the Chernobyl accident. Radiatsiya i risk = Radiation and Risk. 2023;32(4):79-93 (in Russian)]. DOI:10.21870/0131-3878-2023-32-4-79-93
3. Mansouri B, Moradi A, Saba F. Blood oxidative stress parameters in hospital workers occupationally exposed to low doses of ionizing radiation: A systematic review and meta-analysis. Heliyon. 2024;10(22):e39989. DOI:10.1016/j.heliyon.2024.e39989
4. Mousavikia SN, Bahreyni Toossi MT, Khademi S, et al. Evaluation of micronuclei and antioxidant status in hospital radiation workers occupationally exposed to low-dose ionizing radiation. BMC Health Serv Res. 2023;23(1):540. DOI:10.1186/s12913-023-09516-2
5. Gao J, Dong X, Liu T, et al. Antioxidant status and cytogenetic damage in hospital workers occupationally exposed to low dose ionizing radiation. Mutat Res Genet Toxicol Environ Mutagen. 2020:850-851:503152. DOI:10.1016/j.mrgentox.2020.503152
6. Siama Z, Zosang-Zuali M, Vanlalruati A, et al. Chronic low dose exposure of hospital workers to ionizing radiation leads to increased micronuclei frequency and reduced antioxidants in their peripheral blood lymphocytes. Int J Radiat Biol. 2019;95(6):697-709. DOI:10.1080/09553002.2019.1571255
7. Bolbol SA, Zaitoun MF, El-Magd SAA, Mohammed NA. Healthcare workers exposure to ionizing radiation: Oxidative stress and antioxidant response. Indian J Occup Environ Med. 2021;25(2):72-7. DOI:10.4103/ijoem.IJOEM_198_20
8. Tharmalingam S, Sreetharan S, Kulesza AV, et al. Low-dose ionizing radiation exposure, oxidative stress and epigenetic programing of health and disease. Radiat Res. 2017;188(4.2):525-38. DOI:10.1667/RR14587.1
9. Lambring CB, Chen L, Nelson C, et al. Oxidative stress and cancer: Harnessing the therapeutic potential of curcumin and analogues against cancer. Eur J Biol. 2023;82(2):317-25. DOI:10.26650/eurjbiol.2023.1348427
10. Domenicotti C, Marengo B. Paradox role of oxidative stress in cancer: State of the art. Antioxidants (Basel). 2022;11(5):1027. DOI:10.3390/antiox11051027
11. Korkmaz ŞA, Kaymak SU, Neşelioğlu S, Erel Ö. Thiol-disulphide homeostasis in patients with schizophrenia: The potential biomarkers of oxidative stress in acute exacerbation of schizophrenia. Clin Psychopharmacol Neurosci. 2024;22(1):139-50. DOI:10.9758/cpn.23.1084
12. Zhao MJ, Yuan S, Zi H, et al. Oxidative stress links aging-associated cardiovascular diseases and prostatic diseases. Oxid Med Cell Longev. 2021;2021:5896136. DOI:10.1155/2021/5896136
13. Nitti M, Marengo B, Furfaro AL, et al. Hormesis and oxidative distress: pathophysiology of reactive oxygen species and the open question of antioxidant modulation and supplementation. Antioxidants (Basel). 2022;11(8):1613. DOI:10.3390/antiox11081613
14. Desideri E, Ciccarone F, Ciriolo MR, Targeting glutathione metabolism: Partner in crime in anticancer therapy. Nutrients. 2019;11(8):1926. DOI:10.3390/nu11081926
15. Halliwell B. Reactive species and antioxidants. Redox biology is a fundamental theme of aerobic life courier new. Plant Physiol. 2006;141(2):312-22. DOI:10.1104/pp.106.077073
16. Musaogullari A, Chai YC. Redox regulation by protein s-glutathionylation: From molecular mechanisms to implications in health and disease. Int J Mol Sci. 2020;21(21):8113. DOI:10.3390/ijms21218113
17. Lu SC. Glutathione synthesis. Biochim Biophys Acta. 2013;1830(5):3143-53. DOI:10.1016/j.bbagen.2012.09.008
18. Vivancos PD, Wolff T, Markovic J, et al. A nuclear glutathione cycle within the cell cycle. Biochem J. 2010;431(2):169-78. DOI:10.1042/BJ20100409
19. Corso CR, Acco A. Glutathione system in animal model of solid tumors: From regulation to therapeutic target. Crit Rev Oncol Hematol. 2018;128:43-57. DOI:10.1016/j.critrevonc.2018.05.014
20. Liguori I, Russo G, Curcio F, et al. Oxidative stress, aging, and diseases. Clin Interv Aging. 2018;13:757-72. DOI:10.2147/CIA.S158513
21. Buşu C, Li W, Caldito G, Aw TY. Inhibition of glutathione synthesis in brain endothelial cells lengthens S-phase transit time in the cell cycle: Implications for proliferation in recovery from oxidative stress and endothelial cell damage. Redox Biol. 2013;1(1):131-9. DOI:10.1016/j.redox.2013.01.003
22. Yamashita R, Komaki Y, Yang G, Ibuki Y. Cell line-dependent difference in glutathione levels affects the cigarette sidestream smoke-induced inhibition of nucleotide excision repair. Mutat Res Genet Toxicol Environ Mutagen. 2020;858-860:503273. DOI:10.1016/j.mrgentox.2020.503273
23. Крикунова Л.И., Мкртчян Л.С., Замулаева И.А., и др. Окислительный стресс у женщин с гиперпролиферативными заболеваниями: негормональные возможности коррекции. Акушерство и гинекология. 2024;10:138-46 [Krikunova LI, Mkrtchyan LS, Zamulaeva IA, et al. Oxidative stress in women with hyperproliferative diseases: Non-hormonal treatment options. Obstetrics and Gynegology. 2024;10:138-46 (in Russian)]. DOI:10.18565/aig.2024.242
24. Foppoli C, De Marco F, Cini C, Perluigi M. Redox control of viral carcinogenesis: The human papillomavirus paradigm. Biochim Biophys Acta. 2015;1850(8):1622-32. DOI:10.1016/j.bbagen.2014.12.016
25. Cruz-Gregorio A, Aranda-Rivera AK. Redox-sensitive signalling pathways regulated by human papillomavirus in HPV-related cancers. Rev Med Virol. 2021;31(6):e2230. DOI:10.1002/rmv.2230
26. Reyes-Hernández OD, Figueroa-González G, Quintas-Granados LI, et al. 3,3'-Diindolylmethane and indole-3-carbinol: Potential therapeutic molecules for cancer chemoprevention and treatment via regulating cellular signaling pathways. Cancer Cell Int. 2023;23(1):180. DOI:10.1186/s12935-023-03031-4
27. Tretter V, Hochreiter B, Zach ML, et al. Understanding cellular redox homeostasis: A challenge for precision medicine. Int J Mol Sci. 2021;23(1):106. DOI:10.3390/ijms23010106
28. Полуэктова М.В., Мкртчян Л.С., Чиркова Т.В., и др. Антиоксидантные эффекты лигнана – 7-гидроксиматаирезинола в качестве комплементарной терапии гинекологических заболеваний. Гинекология. 2018;20(6):25-30 [Poluektova MV, Mkrtchyan LS, Тсhirkova TV, et al. The lignans 7-hydroxymatairesinol application in adjuvant therapy of gynecological diseases. Gynecology. 2018;20(6):25-30 (in Russian)]. DOI:10.26442/20795696.2018.6.000048
29. Кузьмина Е.Г., Мкртчян Л.С., Крикунова Л.И., и др. Роль 7-гидроксиматаирезинола в противовоспалительной терапии гинекологических заболеваний. Лечащий врач. 2018;12:2-7 [Kuzmina EG, Mkrtchyan LS, Krikunova LI, et al. Role of 7-hydroximateiresinol in anti-inflammatory therapy of gynecologic diseases. Lechashchii vrach. 2018;12:2-7 (in Russian)].
30. American College of Radiology (ACR). ACR-BI-RADS. 5th Edition. ACR Breast Imaging Reporting and Data System, Breast Imaging Atlas; BI-RADS. Reston, VA: American College of Radiology, 2014.
31. Tessler FN, Middleton WD, Grant EG, et al. ACR Thyroid Imaging, Reporting and Data System (TI-RADS): White Paper of the ACR TI-RADS Committee. J Am Coll Radiol. 2017;14(5):587-95. DOI:10.1016/j.jacr.2017.01.046
32. Munro MG, Critchley HO, Broder MS, Fraser IS; FIGO Working Group on Menstrual Disorders. FIGO classification system (PALM-COEIN) for causes of abnormal uterine bleeding in nongravid women of reproductive age. Int J Gynaecol Obstet. 2011;113(1):3-13. DOI:10.1016/j.ijgo.2010.11.011
33. American College of Radiology (ACR). Assessment Categories Algorithm. Available at: https://www.acr.org/-/media/ACR/Files/RADS/O-RADS/US-v2022/O-RADS-US-v2022-Assessment-Categories-Alg.... Accessed: 05.04.2025.
34. Akbarzadeh A, Rezaei-Sadabady R, Davaran S, et al. Liposome: classification, preparation, and applications. Nanoscale Res Lett. 2013;8(1):102.
35. Ajazuddin Saraf S. Applications of novel drug delivery system for herbal formulations. Fitoterapia. 2010;81(7):680-9. DOI:0.1016/j.fitote.2010.05.001
36. Ko J, Yoo C, Xing D, et al. Pharmacokinetic Analyses of Liposomal and Non-Liposomal Multivitamin/Mineral Formulations. Nutrients. 2023;15(13):3073. DOI:10.3390/nu15133073
37. Eisenhauer EA, Therasse P, Bogaerts J, et al. New response evaluation criteria in solid tumours: Revised RECIST guideline (version 1.1). Eur J Cancer. 2009;45(2):228-47. DOI:10.1016/j.ejca.2008.10.026
38. Morisky DE, Green LW, Levine DM. Concurrent and predictive validity of a self-reported measure of medication adherence. Med Care. 1986;24(1):67-74. PMID:3945130
39. Marimoutou M, Le Sage F, Smadja J, et al. Antioxidant polyphenol-rich extracts from the medicinal plants Antirhea borbonica, Doratoxylon apetalum and Gouania mauritiana protect 3T3-L1 preadipocytes against H2O2, TNFα and LPS inflammatory mediators by regulating the expression of superoxide dismutase and NF-κB genes. J Inflamm. 2015;12(10):3-15. DOI:10.1186/s12950-015-0055-6
40. Темирбуланов P.A., Селезнёв E.H. Метод повышения интенсивности свободнорадикального окисления липидосодержащих компонентов крови и его диагностическое значение. Лабораторное дело. 1981;4:209-11 [Temirbulanov PA, Seleznev EH. Method for increasing the intensity of free radical oxidation of lipid-containing blood components and its diagnostic value. Laboratornoe Delo. 1981;4:209-11 (in Russian)].
41. Osipov AN, Ryabchenko NI, Ivannik BP, et al. A prior administration of heavy metals reduces thymus lymphocyte DNA lesions and lipid peroxidation in gamma-irradiated mice. J Phys IV France. 2003;107:987-92. DOI:10.1051/jp4:20030464
2. Ivanova TI, Dzikovskaya LA, Khorokhorina VA, et al. Malondialdehyde levels in the blood of women exposed to radiation as a result of the Chernobyl accident. Radiatsiya i risk = Radiation and Risk. 2023;32(4):79-93 (in Russian). DOI:10.21870/0131-3878-2023-32-4-79-93
3. Mansouri B, Moradi A, Saba F. Blood oxidative stress parameters in hospital workers occupationally exposed to low doses of ionizing radiation: A systematic review and meta-analysis. Heliyon. 2024;10(22):e39989. DOI:10.1016/j.heliyon.2024.e39989
4. Mousavikia SN, Bahreyni Toossi MT, Khademi S, et al. Evaluation of micronuclei and antioxidant status in hospital radiation workers occupationally exposed to low-dose ionizing radiation. BMC Health Serv Res. 2023;23(1):540. DOI:10.1186/s12913-023-09516-2
5. Gao J, Dong X, Liu T, et al. Antioxidant status and cytogenetic damage in hospital workers occupationally exposed to low dose ionizing radiation. Mutat Res Genet Toxicol Environ Mutagen. 2020:850-851:503152. DOI:10.1016/j.mrgentox.2020.503152
6. Siama Z, Zosang-Zuali M, Vanlalruati A, et al. Chronic low dose exposure of hospital workers to ionizing radiation leads to increased micronuclei frequency and reduced antioxidants in their peripheral blood lymphocytes. Int J Radiat Biol. 2019;95(6):697-709. DOI:10.1080/09553002.2019.1571255
7. Bolbol SA, Zaitoun MF, El-Magd SAA, Mohammed NA. Healthcare workers exposure to ionizing radiation: Oxidative stress and antioxidant response. Indian J Occup Environ Med. 2021;25(2):72-7. DOI:10.4103/ijoem.IJOEM_198_20
8. Tharmalingam S, Sreetharan S, Kulesza AV, et al. Low-dose ionizing radiation exposure, oxidative stress and epigenetic programing of health and disease. Radiat Res. 2017;188(4.2):525-38. DOI:10.1667/RR14587.1
9. Lambring CB, Chen L, Nelson C, et al. Oxidative stress and cancer: Harnessing the therapeutic potential of curcumin and analogues against cancer. Eur J Biol. 2023;82(2):317-25. DOI:10.26650/eurjbiol.2023.1348427
10. Domenicotti C, Marengo B. Paradox role of oxidative stress in cancer: State of the art. Antioxidants (Basel). 2022;11(5):1027. DOI:10.3390/antiox11051027
11. Korkmaz ŞA, Kaymak SU, Neşelioğlu S, Erel Ö. Thiol-disulphide homeostasis in patients with schizophrenia: The potential biomarkers of oxidative stress in acute exacerbation of schizophrenia. Clin Psychopharmacol Neurosci. 2024;22(1):139-50. DOI:10.9758/cpn.23.1084
12. Zhao MJ, Yuan S, Zi H, et al. Oxidative stress links aging-associated cardiovascular diseases and prostatic diseases. Oxid Med Cell Longev. 2021;2021:5896136. DOI:10.1155/2021/5896136
13. Nitti M, Marengo B, Furfaro AL, et al. Hormesis and oxidative distress: pathophysiology of reactive oxygen species and the open question of antioxidant modulation and supplementation. Antioxidants (Basel). 2022;11(8):1613. DOI:10.3390/antiox11081613
14. Desideri E, Ciccarone F, Ciriolo MR, Targeting glutathione metabolism: Partner in crime in anticancer therapy. Nutrients. 2019;11(8):1926. DOI:10.3390/nu11081926
15. Halliwell B. Reactive species and antioxidants. Redox biology is a fundamental theme of aerobic life courier new. Plant Physiol. 2006;141(2):312-22. DOI:10.1104/pp.106.077073
16. Musaogullari A, Chai YC. Redox regulation by protein s-glutathionylation: From molecular mechanisms to implications in health and disease. Int J Mol Sci. 2020;21(21):8113. DOI:10.3390/ijms21218113
17. Lu SC. Glutathione synthesis. Biochim Biophys Acta. 2013;1830(5):3143-53. DOI:10.1016/j.bbagen.2012.09.008
18. Vivancos PD, Wolff T, Markovic J, et al. A nuclear glutathione cycle within the cell cycle. Biochem J. 2010;431(2):169-78. DOI:10.1042/BJ20100409
19. Corso CR, Acco A. Glutathione system in animal model of solid tumors: From regulation to therapeutic target. Crit Rev Oncol Hematol. 2018;128:43-57. DOI:10.1016/j.critrevonc.2018.05.014
20. Liguori I, Russo G, Curcio F, et al. Oxidative stress, aging, and diseases. Clin Interv Aging. 2018;13:757-72. DOI:10.2147/CIA.S158513
21. Buşu C, Li W, Caldito G, Aw TY. Inhibition of glutathione synthesis in brain endothelial cells lengthens S-phase transit time in the cell cycle: Implications for proliferation in recovery from oxidative stress and endothelial cell damage. Redox Biol. 2013;1(1):131-9. DOI:10.1016/j.redox.2013.01.003
22. Yamashita R, Komaki Y, Yang G, Ibuki Y. Cell line-dependent difference in glutathione levels affects the cigarette sidestream smoke-induced inhibition of nucleotide excision repair. Mutat Res Genet Toxicol Environ Mutagen. 2020;858-860:503273. DOI:10.1016/j.mrgentox.2020.503273
23. Krikunova LI, Mkrtchyan LS, Zamulaeva IA, et al. Oxidative stress in women with hyperproliferative diseases: Non-hormonal treatment options. Obstetrics and Gynegology. 2024;10:138-46 (in Russian). DOI:10.18565/aig.2024.242
24. Foppoli C, De Marco F, Cini C, Perluigi M. Redox control of viral carcinogenesis: The human papillomavirus paradigm. Biochim Biophys Acta. 2015;1850(8):1622-32. DOI:10.1016/j.bbagen.2014.12.016
25. Cruz-Gregorio A, Aranda-Rivera AK. Redox-sensitive signalling pathways regulated by human papillomavirus in HPV-related cancers. Rev Med Virol. 2021;31(6):e2230. DOI:10.1002/rmv.2230
26. Reyes-Hernández OD, Figueroa-González G, Quintas-Granados LI, et al. 3,3'-Diindolylmethane and indole-3-carbinol: Potential therapeutic molecules for cancer chemoprevention and treatment via regulating cellular signaling pathways. Cancer Cell Int. 2023;23(1):180. DOI:10.1186/s12935-023-03031-4
27. Tretter V, Hochreiter B, Zach ML, et al. Understanding cellular redox homeostasis: A challenge for precision medicine. Int J Mol Sci. 2021;23(1):106. DOI:10.3390/ijms23010106
28. Poluektova MV, Mkrtchyan LS, Тсhirkova TV, et al. The lignans 7-hydroxymatairesinol application in adjuvant therapy of gynecological diseases. Gynecology. 2018;20(6):25-30 (in Russian). DOI:10.26442/20795696.2018.6.000048
29. Kuzmina EG, Mkrtchyan LS, Krikunova LI, et al. Role of 7-hydroximateiresinol in anti-inflammatory therapy of gynecologic diseases. Lechashchii vrach. 2018;12:2-7 (in Russian).
30. American College of Radiology (ACR). ACR-BI-RADS. 5th Edition. ACR Breast Imaging Reporting and Data System, Breast Imaging Atlas; BI-RADS. Reston, VA: American College of Radiology, 2014.
31. Tessler FN, Middleton WD, Grant EG, et al. ACR Thyroid Imaging, Reporting and Data System (TI-RADS): White Paper of the ACR TI-RADS Committee. J Am Coll Radiol. 2017;14(5):587-95. DOI:10.1016/j.jacr.2017.01.046
32. Munro MG, Critchley HO, Broder MS, Fraser IS; FIGO Working Group on Menstrual Disorders. FIGO classification system (PALM-COEIN) for causes of abnormal uterine bleeding in nongravid women of reproductive age. Int J Gynaecol Obstet. 2011;113(1):3-13. DOI:10.1016/j.ijgo.2010.11.011
33. American College of Radiology (ACR). Assessment Categories Algorithm. Available at: https://www.acr.org/-/media/ACR/Files/RADS/O-RADS/US-v2022/O-RADS-US-v2022-Assessment-Categories-Alg.... Accessed: 05.04.2025.
34. Akbarzadeh A, Rezaei-Sadabady R, Davaran S, et al. Liposome: classification, preparation, and applications. Nanoscale Res Lett. 2013;8(1):102.
35. Ajazuddin Saraf S. Applications of novel drug delivery system for herbal formulations. Fitoterapia. 2010;81(7):680-9. DOI:0.1016/j.fitote.2010.05.001
36. Ko J, Yoo C, Xing D, et al. Pharmacokinetic Analyses of Liposomal and Non-Liposomal Multivitamin/Mineral Formulations. Nutrients. 2023;15(13):3073. DOI:10.3390/nu15133073
37. Eisenhauer EA, Therasse P, Bogaerts J, et al. New response evaluation criteria in solid tumours: Revised RECIST guideline (version 1.1). Eur J Cancer. 2009;45(2):228-47. DOI:10.1016/j.ejca.2008.10.026
38. Morisky DE, Green LW, Levine DM. Concurrent and predictive validity of a self-reported measure of medication adherence. Med Care. 1986;24(1):67-74. PMID:3945130
39. Marimoutou M, Le Sage F, Smadja J, et al. Antioxidant polyphenol-rich extracts from the medicinal plants Antirhea borbonica, Doratoxylon apetalum and Gouania mauritiana protect 3T3-L1 preadipocytes against H2O2, TNFα and LPS inflammatory mediators by regulating the expression of superoxide dismutase and NF-κB genes. J Inflamm. 2015;12(10):3-15. DOI:10.1186/s12950-015-0055-6
40. Temirbulanov PA, Seleznev EH. Method for increasing the intensity of free radical oxidation of lipid-containing blood components and its diagnostic value. Laboratornoe Delo. 1981;4:209-11 (in Russian).
41. Osipov AN, Ryabchenko NI, Ivannik BP, et al. A prior administration of heavy metals reduces thymus lymphocyte DNA lesions and lipid peroxidation in gamma-irradiated mice. J Phys IV France. 2003;107:987-92. DOI:10.1051/jp4:20030464
2. Иванова Т.И., Дзиковская Л.А., Хорохорина В.А., и др. Уровень малондиальдегида в крови женщин, подвергшихся радиационному воздействию в результате чернобыльской аварии. Радиация и риск. 2023;32(4):79-93 [Ivanova TI, Dzikovskaya LA, Khorokhorina VA, et al. Malondialdehyde levels in the blood of women exposed to radiation as a result of the Chernobyl accident. Radiatsiya i risk = Radiation and Risk. 2023;32(4):79-93 (in Russian)]. DOI:10.21870/0131-3878-2023-32-4-79-93
3. Mansouri B, Moradi A, Saba F. Blood oxidative stress parameters in hospital workers occupationally exposed to low doses of ionizing radiation: A systematic review and meta-analysis. Heliyon. 2024;10(22):e39989. DOI:10.1016/j.heliyon.2024.e39989
4. Mousavikia SN, Bahreyni Toossi MT, Khademi S, et al. Evaluation of micronuclei and antioxidant status in hospital radiation workers occupationally exposed to low-dose ionizing radiation. BMC Health Serv Res. 2023;23(1):540. DOI:10.1186/s12913-023-09516-2
5. Gao J, Dong X, Liu T, et al. Antioxidant status and cytogenetic damage in hospital workers occupationally exposed to low dose ionizing radiation. Mutat Res Genet Toxicol Environ Mutagen. 2020:850-851:503152. DOI:10.1016/j.mrgentox.2020.503152
6. Siama Z, Zosang-Zuali M, Vanlalruati A, et al. Chronic low dose exposure of hospital workers to ionizing radiation leads to increased micronuclei frequency and reduced antioxidants in their peripheral blood lymphocytes. Int J Radiat Biol. 2019;95(6):697-709. DOI:10.1080/09553002.2019.1571255
7. Bolbol SA, Zaitoun MF, El-Magd SAA, Mohammed NA. Healthcare workers exposure to ionizing radiation: Oxidative stress and antioxidant response. Indian J Occup Environ Med. 2021;25(2):72-7. DOI:10.4103/ijoem.IJOEM_198_20
8. Tharmalingam S, Sreetharan S, Kulesza AV, et al. Low-dose ionizing radiation exposure, oxidative stress and epigenetic programing of health and disease. Radiat Res. 2017;188(4.2):525-38. DOI:10.1667/RR14587.1
9. Lambring CB, Chen L, Nelson C, et al. Oxidative stress and cancer: Harnessing the therapeutic potential of curcumin and analogues against cancer. Eur J Biol. 2023;82(2):317-25. DOI:10.26650/eurjbiol.2023.1348427
10. Domenicotti C, Marengo B. Paradox role of oxidative stress in cancer: State of the art. Antioxidants (Basel). 2022;11(5):1027. DOI:10.3390/antiox11051027
11. Korkmaz ŞA, Kaymak SU, Neşelioğlu S, Erel Ö. Thiol-disulphide homeostasis in patients with schizophrenia: The potential biomarkers of oxidative stress in acute exacerbation of schizophrenia. Clin Psychopharmacol Neurosci. 2024;22(1):139-50. DOI:10.9758/cpn.23.1084
12. Zhao MJ, Yuan S, Zi H, et al. Oxidative stress links aging-associated cardiovascular diseases and prostatic diseases. Oxid Med Cell Longev. 2021;2021:5896136. DOI:10.1155/2021/5896136
13. Nitti M, Marengo B, Furfaro AL, et al. Hormesis and oxidative distress: pathophysiology of reactive oxygen species and the open question of antioxidant modulation and supplementation. Antioxidants (Basel). 2022;11(8):1613. DOI:10.3390/antiox11081613
14. Desideri E, Ciccarone F, Ciriolo MR, Targeting glutathione metabolism: Partner in crime in anticancer therapy. Nutrients. 2019;11(8):1926. DOI:10.3390/nu11081926
15. Halliwell B. Reactive species and antioxidants. Redox biology is a fundamental theme of aerobic life courier new. Plant Physiol. 2006;141(2):312-22. DOI:10.1104/pp.106.077073
16. Musaogullari A, Chai YC. Redox regulation by protein s-glutathionylation: From molecular mechanisms to implications in health and disease. Int J Mol Sci. 2020;21(21):8113. DOI:10.3390/ijms21218113
17. Lu SC. Glutathione synthesis. Biochim Biophys Acta. 2013;1830(5):3143-53. DOI:10.1016/j.bbagen.2012.09.008
18. Vivancos PD, Wolff T, Markovic J, et al. A nuclear glutathione cycle within the cell cycle. Biochem J. 2010;431(2):169-78. DOI:10.1042/BJ20100409
19. Corso CR, Acco A. Glutathione system in animal model of solid tumors: From regulation to therapeutic target. Crit Rev Oncol Hematol. 2018;128:43-57. DOI:10.1016/j.critrevonc.2018.05.014
20. Liguori I, Russo G, Curcio F, et al. Oxidative stress, aging, and diseases. Clin Interv Aging. 2018;13:757-72. DOI:10.2147/CIA.S158513
21. Buşu C, Li W, Caldito G, Aw TY. Inhibition of glutathione synthesis in brain endothelial cells lengthens S-phase transit time in the cell cycle: Implications for proliferation in recovery from oxidative stress and endothelial cell damage. Redox Biol. 2013;1(1):131-9. DOI:10.1016/j.redox.2013.01.003
22. Yamashita R, Komaki Y, Yang G, Ibuki Y. Cell line-dependent difference in glutathione levels affects the cigarette sidestream smoke-induced inhibition of nucleotide excision repair. Mutat Res Genet Toxicol Environ Mutagen. 2020;858-860:503273. DOI:10.1016/j.mrgentox.2020.503273
23. Крикунова Л.И., Мкртчян Л.С., Замулаева И.А., и др. Окислительный стресс у женщин с гиперпролиферативными заболеваниями: негормональные возможности коррекции. Акушерство и гинекология. 2024;10:138-46 [Krikunova LI, Mkrtchyan LS, Zamulaeva IA, et al. Oxidative stress in women with hyperproliferative diseases: Non-hormonal treatment options. Obstetrics and Gynegology. 2024;10:138-46 (in Russian)]. DOI:10.18565/aig.2024.242
24. Foppoli C, De Marco F, Cini C, Perluigi M. Redox control of viral carcinogenesis: The human papillomavirus paradigm. Biochim Biophys Acta. 2015;1850(8):1622-32. DOI:10.1016/j.bbagen.2014.12.016
25. Cruz-Gregorio A, Aranda-Rivera AK. Redox-sensitive signalling pathways regulated by human papillomavirus in HPV-related cancers. Rev Med Virol. 2021;31(6):e2230. DOI:10.1002/rmv.2230
26. Reyes-Hernández OD, Figueroa-González G, Quintas-Granados LI, et al. 3,3'-Diindolylmethane and indole-3-carbinol: Potential therapeutic molecules for cancer chemoprevention and treatment via regulating cellular signaling pathways. Cancer Cell Int. 2023;23(1):180. DOI:10.1186/s12935-023-03031-4
27. Tretter V, Hochreiter B, Zach ML, et al. Understanding cellular redox homeostasis: A challenge for precision medicine. Int J Mol Sci. 2021;23(1):106. DOI:10.3390/ijms23010106
28. Полуэктова М.В., Мкртчян Л.С., Чиркова Т.В., и др. Антиоксидантные эффекты лигнана – 7-гидроксиматаирезинола в качестве комплементарной терапии гинекологических заболеваний. Гинекология. 2018;20(6):25-30 [Poluektova MV, Mkrtchyan LS, Тсhirkova TV, et al. The lignans 7-hydroxymatairesinol application in adjuvant therapy of gynecological diseases. Gynecology. 2018;20(6):25-30 (in Russian)]. DOI:10.26442/20795696.2018.6.000048
29. Кузьмина Е.Г., Мкртчян Л.С., Крикунова Л.И., и др. Роль 7-гидроксиматаирезинола в противовоспалительной терапии гинекологических заболеваний. Лечащий врач. 2018;12:2-7 [Kuzmina EG, Mkrtchyan LS, Krikunova LI, et al. Role of 7-hydroximateiresinol in anti-inflammatory therapy of gynecologic diseases. Lechashchii vrach. 2018;12:2-7 (in Russian)].
30. American College of Radiology (ACR). ACR-BI-RADS. 5th Edition. ACR Breast Imaging Reporting and Data System, Breast Imaging Atlas; BI-RADS. Reston, VA: American College of Radiology, 2014.
31. Tessler FN, Middleton WD, Grant EG, et al. ACR Thyroid Imaging, Reporting and Data System (TI-RADS): White Paper of the ACR TI-RADS Committee. J Am Coll Radiol. 2017;14(5):587-95. DOI:10.1016/j.jacr.2017.01.046
32. Munro MG, Critchley HO, Broder MS, Fraser IS; FIGO Working Group on Menstrual Disorders. FIGO classification system (PALM-COEIN) for causes of abnormal uterine bleeding in nongravid women of reproductive age. Int J Gynaecol Obstet. 2011;113(1):3-13. DOI:10.1016/j.ijgo.2010.11.011
33. American College of Radiology (ACR). Assessment Categories Algorithm. Available at: https://www.acr.org/-/media/ACR/Files/RADS/O-RADS/US-v2022/O-RADS-US-v2022-Assessment-Categories-Alg.... Accessed: 05.04.2025.
34. Akbarzadeh A, Rezaei-Sadabady R, Davaran S, et al. Liposome: classification, preparation, and applications. Nanoscale Res Lett. 2013;8(1):102.
35. Ajazuddin Saraf S. Applications of novel drug delivery system for herbal formulations. Fitoterapia. 2010;81(7):680-9. DOI:0.1016/j.fitote.2010.05.001
36. Ko J, Yoo C, Xing D, et al. Pharmacokinetic Analyses of Liposomal and Non-Liposomal Multivitamin/Mineral Formulations. Nutrients. 2023;15(13):3073. DOI:10.3390/nu15133073
37. Eisenhauer EA, Therasse P, Bogaerts J, et al. New response evaluation criteria in solid tumours: Revised RECIST guideline (version 1.1). Eur J Cancer. 2009;45(2):228-47. DOI:10.1016/j.ejca.2008.10.026
38. Morisky DE, Green LW, Levine DM. Concurrent and predictive validity of a self-reported measure of medication adherence. Med Care. 1986;24(1):67-74. PMID:3945130
39. Marimoutou M, Le Sage F, Smadja J, et al. Antioxidant polyphenol-rich extracts from the medicinal plants Antirhea borbonica, Doratoxylon apetalum and Gouania mauritiana protect 3T3-L1 preadipocytes against H2O2, TNFα and LPS inflammatory mediators by regulating the expression of superoxide dismutase and NF-κB genes. J Inflamm. 2015;12(10):3-15. DOI:10.1186/s12950-015-0055-6
40. Темирбуланов P.A., Селезнёв E.H. Метод повышения интенсивности свободнорадикального окисления липидосодержащих компонентов крови и его диагностическое значение. Лабораторное дело. 1981;4:209-11 [Temirbulanov PA, Seleznev EH. Method for increasing the intensity of free radical oxidation of lipid-containing blood components and its diagnostic value. Laboratornoe Delo. 1981;4:209-11 (in Russian)].
41. Osipov AN, Ryabchenko NI, Ivannik BP, et al. A prior administration of heavy metals reduces thymus lymphocyte DNA lesions and lipid peroxidation in gamma-irradiated mice. J Phys IV France. 2003;107:987-92. DOI:10.1051/jp4:20030464
________________________________________________
2. Ivanova TI, Dzikovskaya LA, Khorokhorina VA, et al. Malondialdehyde levels in the blood of women exposed to radiation as a result of the Chernobyl accident. Radiatsiya i risk = Radiation and Risk. 2023;32(4):79-93 (in Russian). DOI:10.21870/0131-3878-2023-32-4-79-93
3. Mansouri B, Moradi A, Saba F. Blood oxidative stress parameters in hospital workers occupationally exposed to low doses of ionizing radiation: A systematic review and meta-analysis. Heliyon. 2024;10(22):e39989. DOI:10.1016/j.heliyon.2024.e39989
4. Mousavikia SN, Bahreyni Toossi MT, Khademi S, et al. Evaluation of micronuclei and antioxidant status in hospital radiation workers occupationally exposed to low-dose ionizing radiation. BMC Health Serv Res. 2023;23(1):540. DOI:10.1186/s12913-023-09516-2
5. Gao J, Dong X, Liu T, et al. Antioxidant status and cytogenetic damage in hospital workers occupationally exposed to low dose ionizing radiation. Mutat Res Genet Toxicol Environ Mutagen. 2020:850-851:503152. DOI:10.1016/j.mrgentox.2020.503152
6. Siama Z, Zosang-Zuali M, Vanlalruati A, et al. Chronic low dose exposure of hospital workers to ionizing radiation leads to increased micronuclei frequency and reduced antioxidants in their peripheral blood lymphocytes. Int J Radiat Biol. 2019;95(6):697-709. DOI:10.1080/09553002.2019.1571255
7. Bolbol SA, Zaitoun MF, El-Magd SAA, Mohammed NA. Healthcare workers exposure to ionizing radiation: Oxidative stress and antioxidant response. Indian J Occup Environ Med. 2021;25(2):72-7. DOI:10.4103/ijoem.IJOEM_198_20
8. Tharmalingam S, Sreetharan S, Kulesza AV, et al. Low-dose ionizing radiation exposure, oxidative stress and epigenetic programing of health and disease. Radiat Res. 2017;188(4.2):525-38. DOI:10.1667/RR14587.1
9. Lambring CB, Chen L, Nelson C, et al. Oxidative stress and cancer: Harnessing the therapeutic potential of curcumin and analogues against cancer. Eur J Biol. 2023;82(2):317-25. DOI:10.26650/eurjbiol.2023.1348427
10. Domenicotti C, Marengo B. Paradox role of oxidative stress in cancer: State of the art. Antioxidants (Basel). 2022;11(5):1027. DOI:10.3390/antiox11051027
11. Korkmaz ŞA, Kaymak SU, Neşelioğlu S, Erel Ö. Thiol-disulphide homeostasis in patients with schizophrenia: The potential biomarkers of oxidative stress in acute exacerbation of schizophrenia. Clin Psychopharmacol Neurosci. 2024;22(1):139-50. DOI:10.9758/cpn.23.1084
12. Zhao MJ, Yuan S, Zi H, et al. Oxidative stress links aging-associated cardiovascular diseases and prostatic diseases. Oxid Med Cell Longev. 2021;2021:5896136. DOI:10.1155/2021/5896136
13. Nitti M, Marengo B, Furfaro AL, et al. Hormesis and oxidative distress: pathophysiology of reactive oxygen species and the open question of antioxidant modulation and supplementation. Antioxidants (Basel). 2022;11(8):1613. DOI:10.3390/antiox11081613
14. Desideri E, Ciccarone F, Ciriolo MR, Targeting glutathione metabolism: Partner in crime in anticancer therapy. Nutrients. 2019;11(8):1926. DOI:10.3390/nu11081926
15. Halliwell B. Reactive species and antioxidants. Redox biology is a fundamental theme of aerobic life courier new. Plant Physiol. 2006;141(2):312-22. DOI:10.1104/pp.106.077073
16. Musaogullari A, Chai YC. Redox regulation by protein s-glutathionylation: From molecular mechanisms to implications in health and disease. Int J Mol Sci. 2020;21(21):8113. DOI:10.3390/ijms21218113
17. Lu SC. Glutathione synthesis. Biochim Biophys Acta. 2013;1830(5):3143-53. DOI:10.1016/j.bbagen.2012.09.008
18. Vivancos PD, Wolff T, Markovic J, et al. A nuclear glutathione cycle within the cell cycle. Biochem J. 2010;431(2):169-78. DOI:10.1042/BJ20100409
19. Corso CR, Acco A. Glutathione system in animal model of solid tumors: From regulation to therapeutic target. Crit Rev Oncol Hematol. 2018;128:43-57. DOI:10.1016/j.critrevonc.2018.05.014
20. Liguori I, Russo G, Curcio F, et al. Oxidative stress, aging, and diseases. Clin Interv Aging. 2018;13:757-72. DOI:10.2147/CIA.S158513
21. Buşu C, Li W, Caldito G, Aw TY. Inhibition of glutathione synthesis in brain endothelial cells lengthens S-phase transit time in the cell cycle: Implications for proliferation in recovery from oxidative stress and endothelial cell damage. Redox Biol. 2013;1(1):131-9. DOI:10.1016/j.redox.2013.01.003
22. Yamashita R, Komaki Y, Yang G, Ibuki Y. Cell line-dependent difference in glutathione levels affects the cigarette sidestream smoke-induced inhibition of nucleotide excision repair. Mutat Res Genet Toxicol Environ Mutagen. 2020;858-860:503273. DOI:10.1016/j.mrgentox.2020.503273
23. Krikunova LI, Mkrtchyan LS, Zamulaeva IA, et al. Oxidative stress in women with hyperproliferative diseases: Non-hormonal treatment options. Obstetrics and Gynegology. 2024;10:138-46 (in Russian). DOI:10.18565/aig.2024.242
24. Foppoli C, De Marco F, Cini C, Perluigi M. Redox control of viral carcinogenesis: The human papillomavirus paradigm. Biochim Biophys Acta. 2015;1850(8):1622-32. DOI:10.1016/j.bbagen.2014.12.016
25. Cruz-Gregorio A, Aranda-Rivera AK. Redox-sensitive signalling pathways regulated by human papillomavirus in HPV-related cancers. Rev Med Virol. 2021;31(6):e2230. DOI:10.1002/rmv.2230
26. Reyes-Hernández OD, Figueroa-González G, Quintas-Granados LI, et al. 3,3'-Diindolylmethane and indole-3-carbinol: Potential therapeutic molecules for cancer chemoprevention and treatment via regulating cellular signaling pathways. Cancer Cell Int. 2023;23(1):180. DOI:10.1186/s12935-023-03031-4
27. Tretter V, Hochreiter B, Zach ML, et al. Understanding cellular redox homeostasis: A challenge for precision medicine. Int J Mol Sci. 2021;23(1):106. DOI:10.3390/ijms23010106
28. Poluektova MV, Mkrtchyan LS, Тсhirkova TV, et al. The lignans 7-hydroxymatairesinol application in adjuvant therapy of gynecological diseases. Gynecology. 2018;20(6):25-30 (in Russian). DOI:10.26442/20795696.2018.6.000048
29. Kuzmina EG, Mkrtchyan LS, Krikunova LI, et al. Role of 7-hydroximateiresinol in anti-inflammatory therapy of gynecologic diseases. Lechashchii vrach. 2018;12:2-7 (in Russian).
30. American College of Radiology (ACR). ACR-BI-RADS. 5th Edition. ACR Breast Imaging Reporting and Data System, Breast Imaging Atlas; BI-RADS. Reston, VA: American College of Radiology, 2014.
31. Tessler FN, Middleton WD, Grant EG, et al. ACR Thyroid Imaging, Reporting and Data System (TI-RADS): White Paper of the ACR TI-RADS Committee. J Am Coll Radiol. 2017;14(5):587-95. DOI:10.1016/j.jacr.2017.01.046
32. Munro MG, Critchley HO, Broder MS, Fraser IS; FIGO Working Group on Menstrual Disorders. FIGO classification system (PALM-COEIN) for causes of abnormal uterine bleeding in nongravid women of reproductive age. Int J Gynaecol Obstet. 2011;113(1):3-13. DOI:10.1016/j.ijgo.2010.11.011
33. American College of Radiology (ACR). Assessment Categories Algorithm. Available at: https://www.acr.org/-/media/ACR/Files/RADS/O-RADS/US-v2022/O-RADS-US-v2022-Assessment-Categories-Alg.... Accessed: 05.04.2025.
34. Akbarzadeh A, Rezaei-Sadabady R, Davaran S, et al. Liposome: classification, preparation, and applications. Nanoscale Res Lett. 2013;8(1):102.
35. Ajazuddin Saraf S. Applications of novel drug delivery system for herbal formulations. Fitoterapia. 2010;81(7):680-9. DOI:0.1016/j.fitote.2010.05.001
36. Ko J, Yoo C, Xing D, et al. Pharmacokinetic Analyses of Liposomal and Non-Liposomal Multivitamin/Mineral Formulations. Nutrients. 2023;15(13):3073. DOI:10.3390/nu15133073
37. Eisenhauer EA, Therasse P, Bogaerts J, et al. New response evaluation criteria in solid tumours: Revised RECIST guideline (version 1.1). Eur J Cancer. 2009;45(2):228-47. DOI:10.1016/j.ejca.2008.10.026
38. Morisky DE, Green LW, Levine DM. Concurrent and predictive validity of a self-reported measure of medication adherence. Med Care. 1986;24(1):67-74. PMID:3945130
39. Marimoutou M, Le Sage F, Smadja J, et al. Antioxidant polyphenol-rich extracts from the medicinal plants Antirhea borbonica, Doratoxylon apetalum and Gouania mauritiana protect 3T3-L1 preadipocytes against H2O2, TNFα and LPS inflammatory mediators by regulating the expression of superoxide dismutase and NF-κB genes. J Inflamm. 2015;12(10):3-15. DOI:10.1186/s12950-015-0055-6
40. Temirbulanov PA, Seleznev EH. Method for increasing the intensity of free radical oxidation of lipid-containing blood components and its diagnostic value. Laboratornoe Delo. 1981;4:209-11 (in Russian).
41. Osipov AN, Ryabchenko NI, Ivannik BP, et al. A prior administration of heavy metals reduces thymus lymphocyte DNA lesions and lipid peroxidation in gamma-irradiated mice. J Phys IV France. 2003;107:987-92. DOI:10.1051/jp4:20030464
Авторы
Л.И. Крикунова1, Л.С. Мкртчян*1,2, И.А. Замулаева1,3, А.О. Якимова1, Л.А. Дзиковская1, Е.С. Дегтярева1, Ж.В. Хайлова1, С.А. Иванов1,4, А.Д. Каприн4–6
1Медицинский радиологический научный центр им. А.Ф. Цыба – филиал ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Минздрава России, Обнинск, Россия;
2Обнинский институт атомной энергетики – филиал ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский ядерный университет „МИФИ”», Обнинск, Россия;
3ММНИО «Объединенный институт ядерных исследований», Дубна, Россия;
4ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы», Москва, Россия;
5Московский научно-исследовательский онкологический институт им. П.А. Герцена – филиал ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Минздрава России, Москва, Россия;
6ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Минздрава России, Москва, Россия
*liana6969@mail.ru
1Tsyb Medical Radiological Research Center – branch of the National Medical Research Radiological Centre, Obninsk, Russia;
2Obninsk Institute for Nuclear Power Engineering, Obninsk, Russia;
3Joint Institute for Nuclear Research, Dubna, Russia;
4Patrice Lumumba Peoples’ Friendship University of Russia, Moscow, Russia;
5Hertsen Moscow Oncology Research Institute – branch of the National Medical Research Radiological Centre, Moscow, Russia;
6National Medical Research Radiological Centre, Moscow, Russia
*liana6969@mail.ru
1Медицинский радиологический научный центр им. А.Ф. Цыба – филиал ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Минздрава России, Обнинск, Россия;
2Обнинский институт атомной энергетики – филиал ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский ядерный университет „МИФИ”», Обнинск, Россия;
3ММНИО «Объединенный институт ядерных исследований», Дубна, Россия;
4ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы», Москва, Россия;
5Московский научно-исследовательский онкологический институт им. П.А. Герцена – филиал ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Минздрава России, Москва, Россия;
6ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Минздрава России, Москва, Россия
*liana6969@mail.ru
________________________________________________
1Tsyb Medical Radiological Research Center – branch of the National Medical Research Radiological Centre, Obninsk, Russia;
2Obninsk Institute for Nuclear Power Engineering, Obninsk, Russia;
3Joint Institute for Nuclear Research, Dubna, Russia;
4Patrice Lumumba Peoples’ Friendship University of Russia, Moscow, Russia;
5Hertsen Moscow Oncology Research Institute – branch of the National Medical Research Radiological Centre, Moscow, Russia;
6National Medical Research Radiological Centre, Moscow, Russia
*liana6969@mail.ru
Цель портала OmniDoctor – предоставление профессиональной информации врачам, провизорам и фармацевтам.