Материалы доступны только для специалистов сферы здравоохранения.
Чтобы посмотреть материал полностью
Авторизуйтесь
или зарегистрируйтесь.
Неспецифический хронический цервицит: клиническое значение, микробиоценоз и диагностические ловушки (ретроспективный анализ 2016–2020 гг.)
Неспецифический хронический цервицит: клиническое значение, микробиоценоз и диагностические ловушки (ретроспективный анализ 2016–2020 гг.)
Одыванова А.А., Межевитинова Е.А., Ильясова Н.А., Асатурова А.В., Донников А.Е., Кепша М.А., Прилепская В.Н. Неспецифический хронический цервицит: клиническое значение, микробиоценоз и диагностические ловушки (ретроспективный анализ 2016–2020 гг.). Гинекология. 2025;27(4):317–323. DOI: 10.26442/20795696.2025.4.203502
________________________________________________
Материалы доступны только для специалистов сферы здравоохранения.
Чтобы посмотреть материал полностью
Авторизуйтесь
или зарегистрируйтесь.
Аннотация
Обоснование. Хронический неспецифический цервицит (ХНЦ) остается одной из наиболее распространенных воспалительных патологий шейки матки (ШМ), однако его клинико-морфологические критерии и диагностическая значимость остаются недостаточно определенными, особенно при отрицательных результатах тестирования на вирус папилломы человека (ВПЧ) и основные инфекции, передаваемые половым путем (ИППП).
Цель. Охарактеризовать клинико-морфологические и микробиологические особенности ХНЦ у женщин репродуктивного возраста при строгом исключении ВПЧ-ассоциированных и специфических инфекционных заболеваний ШМ.
Материалы и методы. Проведен ретроспективный анализ данных 152 женщин 18–49 лет: 131 пациентки с гистологически подтвержденным ХНЦ и 21 условно здоровой женщины. Оценивали клинико-анамнестические данные, расширенную кольпоскопию, жидкостную цитологию, диагностику методом полимеразной цепной реакции на ВПЧ и ИППП, состояние вагинального биоценоза по панели «Фемофлор-16» и гистологическую структуру биоптатов. Статистический анализ включал U-критерий Манна–Уитни, критерий Фишера и расчет отношения шансов с 95% доверительным интервалом.
Результаты. ХНЦ ассоциировался с более ранним возрастом начала половой жизни (p=0,03), высокой частотой хронического сальпингоофорита (45,8%) и эпизодов дисбиоза (41,2%). Гистологически ХНЦ характеризовался почти универсальной лимфоплазмоцитарной инфильтрацией (97,7%) и вариабельными реактивными изменениями эпителия. У пациенток с ХНЦ значительно чаще выявлялся анаэробно-ассоциированный дисбиоз с дефицитом Lactobacillus spp. Кольпоскопические и цитологические изменения нередко имитировали плоскоклеточное интраэпителиальное поражение низкой степени, что приводило к диагностическим трудностям.
Заключение. ХНЦ представляет собой самостоятельный микробиотозависимый воспалительный фенотип ШМ, затрудняющий интерпретацию скрининговых тестов. Морфологическая верификация и оценка микробиоценоза являются ключевыми компонентами диагностики и дифференциации ХНЦ от интраэпителиальных поражений.
Ключевые слова: хронический цервицит, неспецифическое воспаление, шейка матки, кольпоскопия, жидкостная цитология, вагинальный микробиоценоз, Фемофлор-16, анаэробный дисбиоз
Aim. To characterize the clinical, morphological, and microbiological features of CNC in women of reproductive age, with the strict exclusion of HPV-associated and specific infectious diseases of the cervix.
Materials and methods. A retrospective analysis of data from 152 women aged 18–49 was conducted: 131 patients with histologically confirmed CNCs and 21 healthy women. Clinical and history data, extended colposcopy, liquid-based cytology, diagnosis of HPV and STIs using polymerase chain reaction, the state of vaginal biocenosis according to the “Femoflor-16” panel, and the histological data of biopsy specimens were evaluated. Statistical analysis included the Mann–Whitney U test, the Fisher test, and calculation of the odds ratio with a 95% confidence interval.
Results. CNC was associated with an earlier age of onset of sexual activity (p=0.03), a high incidence of chronic salpingo-oophoritis (45.8%), and dysbiosis episodes (41.2%). Histologically, CNC was characterized by almost universal lymphoplasmacytic infiltration (97.7%) and variable reactive epithelial changes. In patients with CNC, anaerobic-associated dysbiosis with Lactobacillus spp. deficiency was much more common. Colposcopic and cytological changes often mimicked low-grade squamous intraepithelial lesions, leading to diagnostic challenges.
Conclusion. CNC is an independent, microbiota-dependent inflammatory cervix phenotype that complicates the interpretation of screening tests. Morphological verification and assessment of the microbiocenosis are key components of diagnosing and differentiating CNCs from intraepithelial lesions.
Keywords: chronic cervicitis, nonspecific inflammation, cervix, colposcopy, liquid-based cytology, vaginal microbiocenosis, Femoflor-16, anaerobic dysbiosis
Цель. Охарактеризовать клинико-морфологические и микробиологические особенности ХНЦ у женщин репродуктивного возраста при строгом исключении ВПЧ-ассоциированных и специфических инфекционных заболеваний ШМ.
Материалы и методы. Проведен ретроспективный анализ данных 152 женщин 18–49 лет: 131 пациентки с гистологически подтвержденным ХНЦ и 21 условно здоровой женщины. Оценивали клинико-анамнестические данные, расширенную кольпоскопию, жидкостную цитологию, диагностику методом полимеразной цепной реакции на ВПЧ и ИППП, состояние вагинального биоценоза по панели «Фемофлор-16» и гистологическую структуру биоптатов. Статистический анализ включал U-критерий Манна–Уитни, критерий Фишера и расчет отношения шансов с 95% доверительным интервалом.
Результаты. ХНЦ ассоциировался с более ранним возрастом начала половой жизни (p=0,03), высокой частотой хронического сальпингоофорита (45,8%) и эпизодов дисбиоза (41,2%). Гистологически ХНЦ характеризовался почти универсальной лимфоплазмоцитарной инфильтрацией (97,7%) и вариабельными реактивными изменениями эпителия. У пациенток с ХНЦ значительно чаще выявлялся анаэробно-ассоциированный дисбиоз с дефицитом Lactobacillus spp. Кольпоскопические и цитологические изменения нередко имитировали плоскоклеточное интраэпителиальное поражение низкой степени, что приводило к диагностическим трудностям.
Заключение. ХНЦ представляет собой самостоятельный микробиотозависимый воспалительный фенотип ШМ, затрудняющий интерпретацию скрининговых тестов. Морфологическая верификация и оценка микробиоценоза являются ключевыми компонентами диагностики и дифференциации ХНЦ от интраэпителиальных поражений.
Ключевые слова: хронический цервицит, неспецифическое воспаление, шейка матки, кольпоскопия, жидкостная цитология, вагинальный микробиоценоз, Фемофлор-16, анаэробный дисбиоз
________________________________________________
Aim. To characterize the clinical, morphological, and microbiological features of CNC in women of reproductive age, with the strict exclusion of HPV-associated and specific infectious diseases of the cervix.
Materials and methods. A retrospective analysis of data from 152 women aged 18–49 was conducted: 131 patients with histologically confirmed CNCs and 21 healthy women. Clinical and history data, extended colposcopy, liquid-based cytology, diagnosis of HPV and STIs using polymerase chain reaction, the state of vaginal biocenosis according to the “Femoflor-16” panel, and the histological data of biopsy specimens were evaluated. Statistical analysis included the Mann–Whitney U test, the Fisher test, and calculation of the odds ratio with a 95% confidence interval.
Results. CNC was associated with an earlier age of onset of sexual activity (p=0.03), a high incidence of chronic salpingo-oophoritis (45.8%), and dysbiosis episodes (41.2%). Histologically, CNC was characterized by almost universal lymphoplasmacytic infiltration (97.7%) and variable reactive epithelial changes. In patients with CNC, anaerobic-associated dysbiosis with Lactobacillus spp. deficiency was much more common. Colposcopic and cytological changes often mimicked low-grade squamous intraepithelial lesions, leading to diagnostic challenges.
Conclusion. CNC is an independent, microbiota-dependent inflammatory cervix phenotype that complicates the interpretation of screening tests. Morphological verification and assessment of the microbiocenosis are key components of diagnosing and differentiating CNCs from intraepithelial lesions.
Keywords: chronic cervicitis, nonspecific inflammation, cervix, colposcopy, liquid-based cytology, vaginal microbiocenosis, Femoflor-16, anaerobic dysbiosis
Полный текст
Список литературы
1. Nyirjesy P. Nongonococcal and Nonchlamydial Cervicitis. Curr Infect Dis Rep. 2001;3(6):540-4. DOI:10.1007/s11908-001-0092-6
2. Унанян А.Л., Коссович Ю.М. Хронический цервицит: особенности этиологии, патогенеза, диагностики и лечения. Российский вестник акушера-гинеколога. 2012;12(6):40-5 [Unanian AL, Kossovich YuM. Chronic cervicitis: specific features of its etiology, pathogenesis, diagnosis, and treatment. Russian Bulletin of Obstetrician-Gynecologist. 2012;12(6):40-5 (in Russian)].
3. Vijayakumar S, Sinha P, Krishnamurthy D. Histomorphological Spectrum of Cervical Lesions in a Rural Hospital. Cureus. 2021;13(9):e18293. DOI:10.7759/cureus.18293
4. Ismail A, Salih ZT. Chronic cervicitis. PathologyOutlines.com. Available at: https://www.pathologyoutlines.com/topic/cervixchroniccervicitis.html. Accessed: 20.06.2025.
5. Ortiz-de la Tabla V, Gutiérrez F. Cervicitis: Etiology, diagnosis and treatment. Enferm Infecc Microbiol Clin (Engl Ed). 2019;37(10):661-6. DOI:10.1016/j.eimc.2018.12.004
6. Workowski KA, Bachmann LH, Chan PA, et al. Sexually Transmitted Infections Treatment Guidelines, 2021. MMWR Recomm Rep. 2021;70(4):1-187. DOI:10.15585/mmwr.rr7004a1
7. Iqbal U, Carlson K, Wills C. Cervicitis. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing, 2025.
8. Vodstrcil LA, Plummer EL, Nguyen TV, et al. Trends in infections detected in women with cervicitis over a decade. Front Reprod Health. 2025;7:1539186. DOI:10.3389/frph.2025.1539186
9. Prendiville W, Sankaranarayanan R. Colposcopy and treatment of cervical precancer. A beginner’s manual. IARC Technical Publication No. 45. Lyon: International Agency for Research on Cancer; 2017. Chapter 9: Inflammatory lesions of the cervix.
10. Dasari P, Rajathi S, Kumar SV. Colposcopic evaluation of cervix with persistent inflammatory Pap smear: A prospective analytical study. Cytojournal. 2010;7:16. DOI:10.4103/1742-6413.67112
11. Прилепская В.Н., Абакарова П.Р., Мухамбеталиева Д.Д. Вульвовагинальные инфекции и женское здоровье. Эффективная фармакотерапия. 2020;16(7):40-6 [Prilepskaya VN, Abakarova PR, Mukhambetalieva DD. Vulvovaginal infections and women’s health. Effective Pharmacotherapy. 2020;16(7):40-6 (in Russian)]. DOI:10.33978/2307-3586-2020-16-7-40-46
12. Ravel J, Gajer P, Abdo Z, et al. Vaginal microbiome of reproductive-age women. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011;108(Suppl. 1):4680-7. DOI:10.1073/pnas.1002611107
13. France M, Alizadeh M, Brown S, et al. Towards a deeper understanding of the vaginal microbiota. Nat Microbiol. 2022;7(3):367-78. DOI:10.1038/s41564-022-01083-2
14. Swidsinski A, Verstraelen H, Loening-Baucke V, et al. Presence of a polymicrobial endometrial biofilm in patients with bacterial vaginosis. PLoS One. 2013;8(1):e53997. DOI:10.1371/journal.pone.0053997
15. Hardy L, Jespers V, Dahchour N, et al. Unravelling the Bacterial Vaginosis-Associated Biofilm: A Multiplex Gardnerella vaginalis and Atopobium vaginae Fluorescence In Situ Hybridization Assay Using Peptide Nucleic Acid Probes. PLoS One. 2015;10(8):e0136658. DOI:10.1371/journal.pone.0136658
16. Hardy L, Jespers V, Abdellati S, et al. A fruitful alliance: the synergy between Atopobium vaginae and Gardnerella vaginalis in bacterial vaginosis-associated biofilm. Sex Transm Infect. 2016;92(7):487-91. DOI:10.1136/sextrans-2015-052475
17. Curty G, de Carvalho PS, Soares MA. The Role of the Cervicovaginal Microbiome on the Genesis and as a Biomarker of Premalignant Cervical Intraepithelial Neoplasia and Invasive Cervical Cancer. Int J Mol Sci. 2019;21(1):222. DOI:10.3390/ijms21010222
18. Dayal S. Clinico-histological analysis of non-neoplastic lesions of cervix. J Pathol Nep. 2018;8(1):1276-9. DOI:10.3126/jpn.v8i1.19453
2. Unanian AL, Kossovich YuM. Chronic cervicitis: specific features of its etiology, pathogenesis, diagnosis, and treatment. Russian Bulletin of Obstetrician-Gynecologist. 2012;12(6):40-5 (in Russian).
3. Vijayakumar S, Sinha P, Krishnamurthy D. Histomorphological Spectrum of Cervical Lesions in a Rural Hospital. Cureus. 2021;13(9):e18293. DOI:10.7759/cureus.18293
4. Ismail A, Salih ZT. Chronic cervicitis. PathologyOutlines.com. Available at: https://www.pathologyoutlines.com/topic/cervixchroniccervicitis.html. Accessed: 20.06.2025.
5. Ortiz-de la Tabla V, Gutiérrez F. Cervicitis: Etiology, diagnosis and treatment. Enferm Infecc Microbiol Clin (Engl Ed). 2019;37(10):661-6. DOI:10.1016/j.eimc.2018.12.004
6. Workowski KA, Bachmann LH, Chan PA, et al. Sexually Transmitted Infections Treatment Guidelines, 2021. MMWR Recomm Rep. 2021;70(4):1-187. DOI:10.15585/mmwr.rr7004a1
7. Iqbal U, Carlson K, Wills C. Cervicitis. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing, 2025.
8. Vodstrcil LA, Plummer EL, Nguyen TV, et al. Trends in infections detected in women with cervicitis over a decade. Front Reprod Health. 2025;7:1539186. DOI:10.3389/frph.2025.1539186
9. Prendiville W, Sankaranarayanan R. Colposcopy and treatment of cervical precancer. A beginner’s manual. IARC Technical Publication No. 45. Lyon: International Agency for Research on Cancer; 2017. Chapter 9: Inflammatory lesions of the cervix.
10. Dasari P, Rajathi S, Kumar SV. Colposcopic evaluation of cervix with persistent inflammatory Pap smear: A prospective analytical study. Cytojournal. 2010;7:16. DOI:10.4103/1742-6413.67112
11. Prilepskaya VN, Abakarova PR, Mukhambetalieva DD. Vulvovaginal infections and women’s health. Effective Pharmacotherapy. 2020;16(7):40-6 (in Russian). DOI:10.33978/2307-3586-2020-16-7-40-46
12. Ravel J, Gajer P, Abdo Z, et al. Vaginal microbiome of reproductive-age women. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011;108(Suppl. 1):4680-7. DOI:10.1073/pnas.1002611107
13. France M, Alizadeh M, Brown S, et al. Towards a deeper understanding of the vaginal microbiota. Nat Microbiol. 2022;7(3):367-78. DOI:10.1038/s41564-022-01083-2
14. Swidsinski A, Verstraelen H, Loening-Baucke V, et al. Presence of a polymicrobial endometrial biofilm in patients with bacterial vaginosis. PLoS One. 2013;8(1):e53997. DOI:10.1371/journal.pone.0053997
15. Hardy L, Jespers V, Dahchour N, et al. Unravelling the Bacterial Vaginosis-Associated Biofilm: A Multiplex Gardnerella vaginalis and Atopobium vaginae Fluorescence In Situ Hybridization Assay Using Peptide Nucleic Acid Probes. PLoS One. 2015;10(8):e0136658. DOI:10.1371/journal.pone.0136658
16. Hardy L, Jespers V, Abdellati S, et al. A fruitful alliance: the synergy between Atopobium vaginae and Gardnerella vaginalis in bacterial vaginosis-associated biofilm. Sex Transm Infect. 2016;92(7):487-91. DOI:10.1136/sextrans-2015-052475
17. Curty G, de Carvalho PS, Soares MA. The Role of the Cervicovaginal Microbiome on the Genesis and as a Biomarker of Premalignant Cervical Intraepithelial Neoplasia and Invasive Cervical Cancer. Int J Mol Sci. 2019;21(1):222. DOI:10.3390/ijms21010222
18. Dayal S. Clinico-histological analysis of non-neoplastic lesions of cervix. J Pathol Nep. 2018;8(1):1276-9. DOI:10.3126/jpn.v8i1.19453
2. Унанян А.Л., Коссович Ю.М. Хронический цервицит: особенности этиологии, патогенеза, диагностики и лечения. Российский вестник акушера-гинеколога. 2012;12(6):40-5 [Unanian AL, Kossovich YuM. Chronic cervicitis: specific features of its etiology, pathogenesis, diagnosis, and treatment. Russian Bulletin of Obstetrician-Gynecologist. 2012;12(6):40-5 (in Russian)].
3. Vijayakumar S, Sinha P, Krishnamurthy D. Histomorphological Spectrum of Cervical Lesions in a Rural Hospital. Cureus. 2021;13(9):e18293. DOI:10.7759/cureus.18293
4. Ismail A, Salih ZT. Chronic cervicitis. PathologyOutlines.com. Available at: https://www.pathologyoutlines.com/topic/cervixchroniccervicitis.html. Accessed: 20.06.2025.
5. Ortiz-de la Tabla V, Gutiérrez F. Cervicitis: Etiology, diagnosis and treatment. Enferm Infecc Microbiol Clin (Engl Ed). 2019;37(10):661-6. DOI:10.1016/j.eimc.2018.12.004
6. Workowski KA, Bachmann LH, Chan PA, et al. Sexually Transmitted Infections Treatment Guidelines, 2021. MMWR Recomm Rep. 2021;70(4):1-187. DOI:10.15585/mmwr.rr7004a1
7. Iqbal U, Carlson K, Wills C. Cervicitis. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing, 2025.
8. Vodstrcil LA, Plummer EL, Nguyen TV, et al. Trends in infections detected in women with cervicitis over a decade. Front Reprod Health. 2025;7:1539186. DOI:10.3389/frph.2025.1539186
9. Prendiville W, Sankaranarayanan R. Colposcopy and treatment of cervical precancer. A beginner’s manual. IARC Technical Publication No. 45. Lyon: International Agency for Research on Cancer; 2017. Chapter 9: Inflammatory lesions of the cervix.
10. Dasari P, Rajathi S, Kumar SV. Colposcopic evaluation of cervix with persistent inflammatory Pap smear: A prospective analytical study. Cytojournal. 2010;7:16. DOI:10.4103/1742-6413.67112
11. Прилепская В.Н., Абакарова П.Р., Мухамбеталиева Д.Д. Вульвовагинальные инфекции и женское здоровье. Эффективная фармакотерапия. 2020;16(7):40-6 [Prilepskaya VN, Abakarova PR, Mukhambetalieva DD. Vulvovaginal infections and women’s health. Effective Pharmacotherapy. 2020;16(7):40-6 (in Russian)]. DOI:10.33978/2307-3586-2020-16-7-40-46
12. Ravel J, Gajer P, Abdo Z, et al. Vaginal microbiome of reproductive-age women. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011;108(Suppl. 1):4680-7. DOI:10.1073/pnas.1002611107
13. France M, Alizadeh M, Brown S, et al. Towards a deeper understanding of the vaginal microbiota. Nat Microbiol. 2022;7(3):367-78. DOI:10.1038/s41564-022-01083-2
14. Swidsinski A, Verstraelen H, Loening-Baucke V, et al. Presence of a polymicrobial endometrial biofilm in patients with bacterial vaginosis. PLoS One. 2013;8(1):e53997. DOI:10.1371/journal.pone.0053997
15. Hardy L, Jespers V, Dahchour N, et al. Unravelling the Bacterial Vaginosis-Associated Biofilm: A Multiplex Gardnerella vaginalis and Atopobium vaginae Fluorescence In Situ Hybridization Assay Using Peptide Nucleic Acid Probes. PLoS One. 2015;10(8):e0136658. DOI:10.1371/journal.pone.0136658
16. Hardy L, Jespers V, Abdellati S, et al. A fruitful alliance: the synergy between Atopobium vaginae and Gardnerella vaginalis in bacterial vaginosis-associated biofilm. Sex Transm Infect. 2016;92(7):487-91. DOI:10.1136/sextrans-2015-052475
17. Curty G, de Carvalho PS, Soares MA. The Role of the Cervicovaginal Microbiome on the Genesis and as a Biomarker of Premalignant Cervical Intraepithelial Neoplasia and Invasive Cervical Cancer. Int J Mol Sci. 2019;21(1):222. DOI:10.3390/ijms21010222
18. Dayal S. Clinico-histological analysis of non-neoplastic lesions of cervix. J Pathol Nep. 2018;8(1):1276-9. DOI:10.3126/jpn.v8i1.19453
________________________________________________
2. Unanian AL, Kossovich YuM. Chronic cervicitis: specific features of its etiology, pathogenesis, diagnosis, and treatment. Russian Bulletin of Obstetrician-Gynecologist. 2012;12(6):40-5 (in Russian).
3. Vijayakumar S, Sinha P, Krishnamurthy D. Histomorphological Spectrum of Cervical Lesions in a Rural Hospital. Cureus. 2021;13(9):e18293. DOI:10.7759/cureus.18293
4. Ismail A, Salih ZT. Chronic cervicitis. PathologyOutlines.com. Available at: https://www.pathologyoutlines.com/topic/cervixchroniccervicitis.html. Accessed: 20.06.2025.
5. Ortiz-de la Tabla V, Gutiérrez F. Cervicitis: Etiology, diagnosis and treatment. Enferm Infecc Microbiol Clin (Engl Ed). 2019;37(10):661-6. DOI:10.1016/j.eimc.2018.12.004
6. Workowski KA, Bachmann LH, Chan PA, et al. Sexually Transmitted Infections Treatment Guidelines, 2021. MMWR Recomm Rep. 2021;70(4):1-187. DOI:10.15585/mmwr.rr7004a1
7. Iqbal U, Carlson K, Wills C. Cervicitis. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing, 2025.
8. Vodstrcil LA, Plummer EL, Nguyen TV, et al. Trends in infections detected in women with cervicitis over a decade. Front Reprod Health. 2025;7:1539186. DOI:10.3389/frph.2025.1539186
9. Prendiville W, Sankaranarayanan R. Colposcopy and treatment of cervical precancer. A beginner’s manual. IARC Technical Publication No. 45. Lyon: International Agency for Research on Cancer; 2017. Chapter 9: Inflammatory lesions of the cervix.
10. Dasari P, Rajathi S, Kumar SV. Colposcopic evaluation of cervix with persistent inflammatory Pap smear: A prospective analytical study. Cytojournal. 2010;7:16. DOI:10.4103/1742-6413.67112
11. Prilepskaya VN, Abakarova PR, Mukhambetalieva DD. Vulvovaginal infections and women’s health. Effective Pharmacotherapy. 2020;16(7):40-6 (in Russian). DOI:10.33978/2307-3586-2020-16-7-40-46
12. Ravel J, Gajer P, Abdo Z, et al. Vaginal microbiome of reproductive-age women. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011;108(Suppl. 1):4680-7. DOI:10.1073/pnas.1002611107
13. France M, Alizadeh M, Brown S, et al. Towards a deeper understanding of the vaginal microbiota. Nat Microbiol. 2022;7(3):367-78. DOI:10.1038/s41564-022-01083-2
14. Swidsinski A, Verstraelen H, Loening-Baucke V, et al. Presence of a polymicrobial endometrial biofilm in patients with bacterial vaginosis. PLoS One. 2013;8(1):e53997. DOI:10.1371/journal.pone.0053997
15. Hardy L, Jespers V, Dahchour N, et al. Unravelling the Bacterial Vaginosis-Associated Biofilm: A Multiplex Gardnerella vaginalis and Atopobium vaginae Fluorescence In Situ Hybridization Assay Using Peptide Nucleic Acid Probes. PLoS One. 2015;10(8):e0136658. DOI:10.1371/journal.pone.0136658
16. Hardy L, Jespers V, Abdellati S, et al. A fruitful alliance: the synergy between Atopobium vaginae and Gardnerella vaginalis in bacterial vaginosis-associated biofilm. Sex Transm Infect. 2016;92(7):487-91. DOI:10.1136/sextrans-2015-052475
17. Curty G, de Carvalho PS, Soares MA. The Role of the Cervicovaginal Microbiome on the Genesis and as a Biomarker of Premalignant Cervical Intraepithelial Neoplasia and Invasive Cervical Cancer. Int J Mol Sci. 2019;21(1):222. DOI:10.3390/ijms21010222
18. Dayal S. Clinico-histological analysis of non-neoplastic lesions of cervix. J Pathol Nep. 2018;8(1):1276-9. DOI:10.3126/jpn.v8i1.19453
Авторы
А.А. Одыванова*, Е.А. Межевитинова, Н.А. Ильясова, А.В. Асатурова, А.Е. Донников, М.А. Кепша, В.Н. Прилепская
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва, Российская Федерация
*lina6345@yandex.ru
Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Moscow, Russian Federation
*lina6345@yandex.ru
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва, Российская Федерация
*lina6345@yandex.ru
________________________________________________
Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Moscow, Russian Federation
*lina6345@yandex.ru
Цель портала OmniDoctor – предоставление профессиональной информации врачам, провизорам и фармацевтам.