Цель исследования. Разработка методики предтрансфузионной реабилитации консервированных эритроцитов для больных с периоперационной кровопотерей тяжелой степени. Материалы и методы. Объектом исследования служила эритроцитарная масса крови человека различных сроков хранения, стабилизированная консервантом CPDA-1. Озонирование эритроцитарной массы осуществлялось посредством ее смешивания с озонированным раствором хлорида натрия 0,9% в эквивалентном объеме, содержащим различные концентрации озона, дискретно возраставшие до 20 мг/л. Через 30 мин экспозиции в суспензии полученной эритроцитарной взвеси определяли концентрации малонового диальдегида, аденозинтрифосфата (АТФ), 2,3-дифосфоглицерата (2,3-ДФГ), активность каталазы в эритроцитах и их электрофоретическую подвижность. Результаты исследования. При воздействии разных соотношений озона и эритроцитов выявляется интервал концентраций озона 0,5–2 мг/л, вызывающих при эквивалентном смешивании восстановление уровня АТФ и 2,3-ДФГ в эритроцитах практически до нормальных значений при сроках хранения от 7 до 21 сут. При сроках хранения эритроцитарной массы 30 сут увеличение содержания 2,3-ДФГ в эритроцитах наблюдалось на фоне истощения пула АТФ в клетках. При этом активность внутриэритроцитарной каталазы в основной группе возрастает, приводя через 30 мин после обработки к существенному снижению малонового диальдегида без нарушения электрофоретической подвижности обрабатываемых эритроцитов. Заключение. В работе продемонстрирован потенциал воздействия озона в малых концентрациях на такие ключевые факторы системы кислородного транспорта, как энергетический и метаболический статус эритроцитов, а также их морфофункциональные свойства (прежде всего деформабельность) при предтрансфузионной обработке.
Objective. To develop techniques pretransfusion rehabilitation canned red blood cells in patients with perioperative blood loss, severe. Materials and methods. The object of the study served as the red cells of various human blood storage time, stable preservative CPDA-1. Ozonation red blood cells was carried out by mixing it with ozonated solution NaCl 0.9% in an equivalent volume containing various concentrations of ozone, discrete increases of up to 20 mg/l. After 30 minutes of exposure to the slurry obtained erythrocyte suspension was determined concentration of malondialdehyde, adenosine triphosphate (ATP), 2,3-diphosphoglycerate (2,3-DPG), catalase activity in erythrocytes and their electrophoretic mobility. Results of the study. Under the influence of different ratios of ozone and erythrocytes detected ozone concentration range of 0.5–2 mg/l, causing an equivalent mixing restoration of ATP levels and 2,3-DPG in red blood cells to near normal values during the shelf life of 7 to 21 days. In terms of storage of packed red blood cells to 30 days, an increase 2,3-DPG content in red blood cells was observed on the background of the depletion of ATP pools in the cells. Thus inside the erythrocytes catalase activity in the basic group increases, resulting in 30 minutes after treatment, a significant reduction of malondialdehyde, without disturbing the electrophoretic mobility of treated erythrocytes. Conclusion. The work demonstrated the potential effects of ozone at low concentrations on key factors such as the system of oxygen transport and energy metabolic status of erythrocytes, as well as their morphological and functional properties (primarily deformability) at pretransfusion processing.
Key words: canned red cells, ozone, adenosine triphosphate, 2,3-diphosphoglycerate, malondialdehyde.
1. Гостищев В.К., Евсеев М.А. Гастродуоденальные кровотечения язвенной этиологии. Руководство для врачей. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008. / Gostishchev V.K., Evseev M.A. Gastroduodenal'nye krovotecheniia iazvennoi etiologii. Rukovodstvo dlia vrachei. M.: GEOTAR-Media, 2008. [in Russian]
2. Малков И.С., Халикова Г.Р., Хамзин И.И. Об эффективности современных методов лечения больных с острыми кровотечениями из верхних отделов желудочно-кишечного тракта. Казанский мед. журн. 2010; 91 (3): 362–6. / Malkov I.S., Khalikova G.R., Khamzin I.I. Ob effektivnosti sovremennykh metodov lecheniia bol'nykh s ostrymi krovotecheniiami iz verkhnikh otdelov zheludochno-kishechnogo trakta. Kazanskii med. zhurn. 2010; 91 (3): 362–6. [in Russian]
3. Лобачева Г.В. Факторы риска развития ранних осложнений и их коррекция у больных после операции на открытом сердце. Дис. ... д-ра мед. наук. М., 2000. / Lobacheva G.V. Faktory riska razvitiia rannikh oslozhnenii i ikh korrektsiia u bol'nykh posle operatsii na otkrytom serdtse. Dis. ... d-ra med. nauk. M., 2000. [in Russian]
4. Мороз В.В., Кирсанова А.К., Новодержкина И.С. и др. Изменения ультраструктуры поверхности мембран эритроцитов после кровопотери и их коррекция лазерным облучением. Общая реаниматология. 2010; VI (2): 5–9. / Moroz V.V., Kirsanova A.K., Novoderzhkina I.S. i dr. Izmeneniia ul'trastruktury poverkhnosti membran eritrotsitov posle krovopoteri i ikh korrektsiia lazernym oblucheniem. Obshchaia reanimatologiia. 2010; VI (2): 5–9. [in Russian]
5. d'Almeida MS, Jagger J, Duggan M et al. A comparison of biochemical and functional alterations of rat and human erythrocytes stored in CPDA-1 for 29 days: implications for animal models of transfusion. Transfus Med 2000; 10: 291–303.
6. Tinmouth A, Fergusson D, Yee IC, Hebert PC. Clinical consequences of red cell storage in the critically ill. Transfusion 2006; 46: 2014–27.
7. Виноградова И.Л., Багрянцева С.Ю., Дервиз Г.В. Метод одновременного определения 2,3-ДФГ и АТФ в эритроцитах. Лаб. дело. 1980; 7: 424–6. / Vinogradova I.L., Bagriantseva S.Iu., Derviz G.V. Metod odnovremennogo opredeleniia 2,3-DFG i ATF v eritrotsitakh. Lab. delo. 1980; 7: 424–6. [in Russian]
________________________________________________
1. Gostishchev V.K., Evseev M.A. Gastroduodenal'nye krovotecheniia iazvennoi etiologii. Rukovodstvo dlia vrachei. M.: GEOTAR-Media, 2008. [in Russian]
2. Malkov I.S., Khalikova G.R., Khamzin I.I. Ob effektivnosti sovremennykh metodov lecheniia bol'nykh s ostrymi krovotecheniiami iz verkhnikh otdelov zheludochno-kishechnogo trakta. Kazanskii med. zhurn. 2010; 91 (3): 362–6. [in Russian]
3. Lobacheva G.V. Faktory riska razvitiia rannikh oslozhnenii i ikh korrektsiia u bol'nykh posle operatsii na otkrytom serdtse. Dis. ... d-ra med. nauk. M., 2000. [in Russian]
4. Moroz V.V., Kirsanova A.K., Novoderzhkina I.S. i dr. Izmeneniia ul'trastruktury poverkhnosti membran eritrotsitov posle krovopoteri i ikh korrektsiia lazernym oblucheniem. Obshchaia reanimatologiia. 2010; VI (2): 5–9. [in Russian]
5. d'Almeida MS, Jagger J, Duggan M et al. A comparison of biochemical and functional alterations of rat and human erythrocytes stored in CPDA-1 for 29 days: implications for animal models of transfusion. Transfus Med 2000; 10: 291–303.
6. Tinmouth A, Fergusson D, Yee IC, Hebert PC. Clinical consequences of red cell storage in the critically ill. Transfusion 2006; 46: 2014–27.
7. Vinogradova I.L., Bagriantseva S.Iu., Derviz G.V. Metod odnovremennogo opredeleniia 2,3-DFG i ATF v eritrotsitakh. Lab. delo. 1980; 7: 424–6. [in Russian]
1 ГБУЗ НО Городская клиническая больница №40. 603083, Россия, Нижний Новгород, ул. Героя Юрия Смирнова, д. 71;
2 ГБОУ ВПО Нижегородская государственная медицинская академия Минздрава России. 603005, Россия, Нижний Новгород, пл. Минина и Пожарского, д. 10/1
*simutis@mail.ru
1 City Clinical Hospital №40. 603083, Russian Federation, Nizhny Novgorod, ul. Geroia Yuriia Smirnova, d. 71;
2 Nizhny Novgorod State Medical Academy of the Ministry of Health of the Russian Federation. 603005, Russian Federation, Nizhny Novgorod, pl. Minina I Pozharskogo, d. 10/1
*simutis@mail.ru